中文摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-12页 |
缩略语/符号说明 | 第12-14页 |
前言 | 第14-17页 |
研究现状、成果 | 第14-16页 |
研究目的、方法 | 第16-17页 |
一、TAT介导的磁性纳米脂质体的制备及其性质的研究 | 第17-23页 |
·对象和方法 | 第17-19页 |
·主要设备 | 第17页 |
·主要试剂 | 第17页 |
·实验步骤 | 第17-19页 |
·载体制备 | 第17-19页 |
·透射电镜(TEM)观察 | 第19页 |
·粒径分布测试 | 第19页 |
·Zeta电位测试 | 第19页 |
·结果 | 第19-20页 |
·磁性纳米脂质体粒径分析、TEM及Zeta电位 | 第19-20页 |
·讨论 | 第20-22页 |
·磁性纳米材料的结构特点与物理特性 | 第20-21页 |
·磁性纳米脂质体的表征分析 | 第21-22页 |
·小结 | 第22-23页 |
二、TAT介导的磁性纳米脂质体透胞作用的实验研究 | 第23-36页 |
·对象和方法 | 第23-28页 |
·组织来源 | 第23页 |
·主要设备 | 第23页 |
·主要试剂 | 第23页 |
·实验用具 | 第23-24页 |
·实验步骤 | 第24-28页 |
·磁性纳米脂质体的制备 | 第24-25页 |
·雪旺细胞的分离 | 第25页 |
·雪旺细胞的传代培养及纯化 | 第25-26页 |
·雪旺细胞的鉴定 | 第26-27页 |
·雪旺细胞的纯度计算 | 第27页 |
·细胞爬片的准备 | 第27页 |
·细胞爬片的制作 | 第27页 |
·雪旺细胞和磁性纳米脂质体共培养 | 第27-28页 |
·结果 | 第28-31页 |
·相差显微镜观察结果 | 第28-29页 |
·S-100、DAPI染色及细胞纯度计算 | 第29-30页 |
·磁性纳米脂质体的细胞摄取实验 | 第30-31页 |
·讨论 | 第31-35页 |
·雪旺细胞体外培养的方法与鉴定 | 第31-33页 |
·HIV-1 TAT作用 | 第33-34页 |
·实验中细胞摄取脂质体情况讨论 | 第34-35页 |
·小结 | 第35-36页 |
三、TAT介导的脂质体在SCI大鼠中的分布 | 第36-47页 |
·对象和方法 | 第36-39页 |
·实验动物及脂质体来源 | 第36页 |
·实验设备 | 第36页 |
·实验器械 | 第36页 |
·实验试剂 | 第36-37页 |
·实验方法 | 第37-39页 |
·动物选择和分组 | 第37页 |
·SCI动物模型的制备 | 第37-38页 |
·术后护理 | 第38页 |
·尾静脉注射 | 第38-39页 |
·动物处死与取材 | 第39页 |
·脊髓冰冻切片的制备 | 第39页 |
·脂质体在SCI大鼠体内分布的观察 | 第39页 |
·结果 | 第39-42页 |
·实验动物观察 | 第39-40页 |
·磁性纳米脂质体在损伤脊髓中的分布 | 第40-41页 |
·磁性纳米脂质体在大鼠肝脏、肾脏和脾脏中的分布 | 第41-42页 |
·讨论 | 第42-46页 |
·脊髓损伤模型的选择 | 第42-43页 |
·壳聚糖及其衍生物的特点 | 第43-44页 |
·磁性纳米脂质体的特性 | 第44-45页 |
·TAT介导的在磁性纳米脂质体SCI大鼠体内的分布 | 第45-46页 |
·小结 | 第46-47页 |
四、TAT介导的脂质体对SCI大鼠的靶向性 | 第47-53页 |
·对象和方法 | 第47-49页 |
·实验动物及脂质体来源 | 第47页 |
·实验设备 | 第47页 |
·实验器械 | 第47页 |
·实验试剂 | 第47-48页 |
·实验方法 | 第48-49页 |
·动物选择和分组 | 第48页 |
·SCI动物模型的制备 | 第48页 |
·尾静脉注射及取材 | 第48页 |
·脊髓冰冻切片的制备 | 第48-49页 |
·脂质体在SCI大鼠体内分布的观察 | 第49页 |
·结果 | 第49-50页 |
·TAT介导的脂质体对SCI大鼠的靶向性 | 第49-50页 |
·讨论 | 第50-52页 |
·外接TAT纳米脂质体的靶向性 | 第50页 |
·TAT介导的磁性纳米脂质体靶向性机制分析 | 第50-52页 |
·小结 | 第52-53页 |
结论 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-62页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第62-63页 |
附录 | 第63-64页 |
综述 | 第64-78页 |
综述参考文献 | 第72-78页 |
致谢 | 第78页 |