| 中文摘要 | 第1-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 第一部分 文献综述 | 第12-49页 |
| 第一章 小胶质细胞的研究进展 | 第12-35页 |
| 1 小胶质细胞的形态与分类 | 第12-13页 |
| 2 小胶质细胞的活化 | 第13-18页 |
| ·活化小胶质细胞形态和功能的变化 | 第13-15页 |
| ·小胶质细胞活化过程中的信号传导 | 第15-16页 |
| ·小胶质细胞活化的分子机制 | 第16-18页 |
| 3 小胶质细胞的功能 | 第18-21页 |
| ·小胶质细胞的吞噬作用 | 第18-19页 |
| ·小胶质细胞的免疫特性 | 第19-20页 |
| ·小胶质细胞的功能:双刃剑 | 第20-21页 |
| 4 小胶质细胞功能的细胞因子调节 | 第21-22页 |
| 5 小胶质细胞与中枢神经系统疾病 | 第22-24页 |
| 参考文献 | 第24-35页 |
| 第二章 趋化因子及其受体的研究进展 | 第35-49页 |
| 1 趋化因子及其受体的结构和分类 | 第35-36页 |
| 2 趋化因子及其受体的编码基因 | 第36页 |
| 3 趋化因子及其受体的来源、产生和调节 | 第36-38页 |
| ·趋化因子及其受体的来源和产生 | 第36-38页 |
| ·趋化因子及其受体产生的调节 | 第38页 |
| 4 趋化因子及其受体的生物学功能 | 第38-41页 |
| 5 趋化因子及其受体的检测方法 | 第41页 |
| 6 趋化因子及其受体与疾病 | 第41-44页 |
| 参考文献 | 第44-49页 |
| 第二部分 研究内容 | 第49-107页 |
| 第一章 小胶质细胞的培养、分离、纯化和鉴定 | 第49-57页 |
| 1 材料与方法 | 第49-52页 |
| ·实验材料 | 第49-50页 |
| ·主要试剂 | 第49-50页 |
| ·主要仪器设备 | 第50页 |
| ·实验动物 | 第50页 |
| ·实验方法 | 第50-52页 |
| ·细胞培养 | 第50-51页 |
| ·小胶质细胞的分离、纯化 | 第51页 |
| ·免疫细胞化学鉴定 | 第51-52页 |
| 2 结果 | 第52-53页 |
| ·原代培养的小胶质细胞 | 第52页 |
| ·原代小胶质细胞的鉴定 | 第52-53页 |
| 3 讨论 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-57页 |
| 第二章 活化的小胶质细胞表达CC趋化因子受体7 | 第57-74页 |
| 1 材料与方法 | 第57-62页 |
| ·实验材料 | 第57-59页 |
| ·主要试剂 | 第57-58页 |
| ·主要仪器设备 | 第58-59页 |
| ·实验动物 | 第59页 |
| ·实验方法 | 第59-62页 |
| ·细胞培养 | 第59页 |
| ·小胶质细胞的分离、纯化 | 第59页 |
| ·小胶质细胞的分组处理 | 第59页 |
| ·RT-PCR | 第59-61页 |
| ·Western blotting检测 | 第61-62页 |
| (1) 蛋白质的提取 | 第61-62页 |
| (2) 细胞蛋白质的测定 | 第62页 |
| (3) SDS-PAGE | 第62页 |
| (4) 免疫印迹显色 | 第62页 |
| ·图像分析 | 第62页 |
| ·数据处理 | 第62页 |
| 2 结果 | 第62-68页 |
| ·小胶质细胞表达CCR7随LPS干预时间的变化 | 第62-64页 |
| ·检测小胶质细胞表达CCR7 mRNA随LPS干预浓度的变化 | 第64-65页 |
| ·Cell Debris对小胶质细胞表达CCR7和CXCR3 mRNA的影响 | 第65-66页 |
| ·LPS和IFN-γ对小胶质细胞CCR7和CXCR3 mRNA的影响 | 第66-68页 |
| 3 讨论 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-74页 |
| 第三章 TGF-β1抑制LPS诱导小胶质细胞CCR7 mRNA的表达 | 第74-84页 |
| 1 材料与方法 | 第74-77页 |
| ·实验材料 | 第74-76页 |
| ·主要试剂 | 第74-75页 |
| ·主要仪器设备 | 第75页 |
| ·实验动物 | 第75-76页 |
| ·实验方法 | 第76-77页 |
| ·细胞培养 | 第76页 |
| ·小胶质细胞的分离、纯化 | 第76页 |
| ·小胶质细胞的分组处理 | 第76页 |
| ·RT-PCR | 第76-77页 |
| ·图像分析 | 第77页 |
| ·数据处理 | 第77页 |
| 2 结果 | 第77-79页 |
| ·U0126和SB203580对LPS诱导小胶质细胞CCR7 mRNA表达的影响 | 第77-78页 |
| ·LY294002对LPS诱导小胶质细胞CCR7 mRNA表达的影响 | 第78页 |
| ·TGF-β1对LPS诱导小胶质细胞CCR7 mRNA表达的影响 | 第78-79页 |
| 3 讨论 | 第79-81页 |
| 参考文献 | 第81-84页 |
| 第四章 活化小胶质细胞炎症相关因子mRNA的表达 | 第84-94页 |
| 1 材料与方法 | 第84-87页 |
| ·实验材料 | 第84-85页 |
| ·主要试剂 | 第84-85页 |
| ·主要仪器设备 | 第85页 |
| ·实验动物 | 第85页 |
| ·细胞株 | 第85页 |
| ·实验方法 | 第85-87页 |
| ·细胞培养 | 第85页 |
| ·小胶质细胞的分离、纯化 | 第85页 |
| ·小胶质细胞的分组处理 | 第85-86页 |
| ·RT-PCR | 第86-87页 |
| ·图像分析 | 第87页 |
| ·数据处理 | 第87页 |
| 2 结果 | 第87-90页 |
| ·LPS对原代小胶质细胞表达TNF-α和iNOS mRNA的影响 | 第87-88页 |
| ·HAPI cells表达TNF-α和iNOS mRNA随LPS干预时间的变化 | 第88-90页 |
| 3 讨论 | 第90-92页 |
| 参考文献 | 第92-94页 |
| 第五章 CCR7与配体CCL19对小胶质细胞生物学功能的影响 | 第94-107页 |
| 1 材料与方法 | 第94-96页 |
| ·实验材料 | 第94-95页 |
| ·主要试剂 | 第94-95页 |
| ·主要仪器设备 | 第95页 |
| ·实验动物 | 第95页 |
| ·实验方法 | 第95-96页 |
| ·细胞培养 | 第95页 |
| ·小胶质细胞的分离、纯化 | 第95页 |
| ·Cell survival assay | 第95-96页 |
| ·Phagocytosis assay | 第96页 |
| ·细胞内Ca~(2+)浓度测定 | 第96页 |
| ·数据处理 | 第96页 |
| 2 结果 | 第96-99页 |
| ·CCL19提高LPS处理小胶质细胞的存活率 | 第96-98页 |
| ·CCL19对LPS处理小胶质细胞吞噬作用的影响 | 第98页 |
| ·CCL19对LPS处理小胶质细胞内Ca~(2+)浓度的影响 | 第98-99页 |
| 3 讨论 | 第99-103页 |
| 参考文献 | 第103-107页 |
| 结论 | 第107-108页 |
| 致谢 | 第108-109页 |
| 附录1 | 第109-110页 |
| 附录2 | 第110页 |
