四川边茶多糖的提取纯化研究
中文摘要 | 第1-6页 |
英文摘要 | 第6-8页 |
目录 | 第8-11页 |
1 前言 | 第11-21页 |
1.1 概述 | 第11页 |
1.2 TPS的提取研究进展 | 第11-14页 |
1.2.1 影响 TPS提取率和生物活性的因素 | 第11-13页 |
1.2.2 TPS的提取方法 | 第13-14页 |
1.3 TPS的纯化 | 第14-16页 |
1.3.1 TPS的初步纯化 | 第14-15页 |
1.3.2 茶叶多糖的进一步纯化 | 第15-16页 |
1.4 茶多糖分析及药理作用 | 第16-19页 |
1.4.1 茶多糖的纯度及其测定方法 | 第16页 |
1.4.2 茶多糖的含量及化学组成 | 第16-17页 |
1.4.3 茶多糖化学组分的结构分析 | 第17-18页 |
1.4.4 茶多糖药理作用 | 第18-19页 |
1.5 试验的内容、目的及意义 | 第19-21页 |
1.5.1 试验的主要内容 | 第19-20页 |
1.5.2 试验的目的和意义 | 第20-21页 |
2 材料与方法 | 第21-27页 |
2.1 试验材料 | 第21页 |
2.1.1 供试材料 | 第21页 |
2.1.2 主要试剂 | 第21页 |
2.1.3 主要仪器 | 第21页 |
2.2 试验方法 | 第21-27页 |
2.2.1 测定方法 | 第21-22页 |
2.2.2 水浸提试验 | 第22-23页 |
2.2.3 超声波辅助提取试验 | 第23-24页 |
2.2.4 茶多糖的纯化试验 | 第24-25页 |
2.2.5 影响茶多糖活性的因素 | 第25页 |
2.2.6 茶多糖组成成分的分析 | 第25-26页 |
2.2.7 数据处理 | 第26页 |
2.2.8 技术路线 | 第26-27页 |
3 结果与分析 | 第27-50页 |
3.1 水浸提法提取茶多糖 | 第27-35页 |
3.1.1 单因素浸提条件对茶多糖浸出率的影响 | 第27-29页 |
3.1.2 TPS提取率二次回归模型的组建与检验 | 第29-35页 |
3.1.3 小结 | 第35页 |
3.2 超声波辅助提取茶多糖 | 第35-39页 |
3.2.1 单因素浸提条件对茶多糖浸出率的影响 | 第35-37页 |
3.2.2 超声波辅助提取正交试验的结果 | 第37-39页 |
3.2.3 小结 | 第39页 |
3.3 茶多糖的初步纯化 | 第39-42页 |
3.3.1 不同浓度乙醇对茶多糖初步纯化的影响 | 第39-40页 |
3.3.2 不同浓缩倍数对茶多糖初步纯化的影响 | 第40页 |
3.3.3 不同脱蛋白方式对茶多糖初步纯化的影响 | 第40-41页 |
3.3.4 双氧水脱色对茶多糖初步纯化的影响 | 第41-42页 |
3.3.5 小结 | 第42页 |
3.4 茶多糖活性的影响因素 | 第42-44页 |
3.4.1 温度对茶多糖活性的影响 | 第42页 |
3.4.2 pH值对茶多糖活性的影响 | 第42-43页 |
3.4.3 超声波辅助提取对茶多糖活性的影响 | 第43页 |
3.4.4 不同脱蛋白方式对茶多糖活性的影响 | 第43-44页 |
3.4.5 不同加工工序对茶多糖活性的影响 | 第44页 |
3.4.6 小结 | 第44页 |
3.5 茶多糖的组成成分 | 第44-46页 |
3.5.1 茶多糖的基本组成成分 | 第44-45页 |
3.5.2 茶多糖的紫外-可见光谱分析 | 第45页 |
3.5.3 单糖组分的分析 | 第45-46页 |
3.5.4 小结 | 第46页 |
3.6 边茶组分的分析 | 第46-50页 |
3.6.1 不同加工工序主要品质成分含量 | 第46-48页 |
3.6.2 不同加工工序主要微量元素含量 | 第48-49页 |
3.6.3 小结 | 第49-50页 |
4 讨论与结论 | 第50-54页 |
4.1 讨论 | 第50-53页 |
4.1.1 浸提条件的确定 | 第50页 |
4.1.2 纯化条件的确定 | 第50-51页 |
4.1.3 茶多糖提取原料的选择 | 第51页 |
4.1.4 微量元素与茶多糖药理作用关系 | 第51-52页 |
4.1.5 四川边茶组分变化与加工工序的关系 | 第52-53页 |
4.2 结论 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-56页 |
致谢 | 第56-57页 |
在校期间发表的论文 | 第57页 |