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四川边茶多糖的提取纯化研究

中文摘要第1-6页
英文摘要第6-8页
目录第8-11页
1 前言第11-21页
 1.1 概述第11页
 1.2 TPS的提取研究进展第11-14页
  1.2.1 影响 TPS提取率和生物活性的因素第11-13页
  1.2.2 TPS的提取方法第13-14页
 1.3 TPS的纯化第14-16页
  1.3.1 TPS的初步纯化第14-15页
  1.3.2 茶叶多糖的进一步纯化第15-16页
 1.4 茶多糖分析及药理作用第16-19页
  1.4.1 茶多糖的纯度及其测定方法第16页
  1.4.2 茶多糖的含量及化学组成第16-17页
  1.4.3 茶多糖化学组分的结构分析第17-18页
  1.4.4 茶多糖药理作用第18-19页
 1.5 试验的内容、目的及意义第19-21页
  1.5.1 试验的主要内容第19-20页
  1.5.2 试验的目的和意义第20-21页
2 材料与方法第21-27页
 2.1 试验材料第21页
  2.1.1 供试材料第21页
  2.1.2 主要试剂第21页
  2.1.3 主要仪器第21页
 2.2 试验方法第21-27页
  2.2.1 测定方法第21-22页
  2.2.2 水浸提试验第22-23页
  2.2.3 超声波辅助提取试验第23-24页
  2.2.4 茶多糖的纯化试验第24-25页
  2.2.5 影响茶多糖活性的因素第25页
  2.2.6 茶多糖组成成分的分析第25-26页
  2.2.7 数据处理第26页
  2.2.8 技术路线第26-27页
3 结果与分析第27-50页
 3.1 水浸提法提取茶多糖第27-35页
  3.1.1 单因素浸提条件对茶多糖浸出率的影响第27-29页
  3.1.2 TPS提取率二次回归模型的组建与检验第29-35页
  3.1.3 小结第35页
 3.2 超声波辅助提取茶多糖第35-39页
  3.2.1 单因素浸提条件对茶多糖浸出率的影响第35-37页
  3.2.2 超声波辅助提取正交试验的结果第37-39页
  3.2.3 小结第39页
 3.3 茶多糖的初步纯化第39-42页
  3.3.1 不同浓度乙醇对茶多糖初步纯化的影响第39-40页
  3.3.2 不同浓缩倍数对茶多糖初步纯化的影响第40页
  3.3.3 不同脱蛋白方式对茶多糖初步纯化的影响第40-41页
  3.3.4 双氧水脱色对茶多糖初步纯化的影响第41-42页
  3.3.5 小结第42页
 3.4 茶多糖活性的影响因素第42-44页
  3.4.1 温度对茶多糖活性的影响第42页
  3.4.2 pH值对茶多糖活性的影响第42-43页
  3.4.3 超声波辅助提取对茶多糖活性的影响第43页
  3.4.4 不同脱蛋白方式对茶多糖活性的影响第43-44页
  3.4.5 不同加工工序对茶多糖活性的影响第44页
  3.4.6 小结第44页
 3.5 茶多糖的组成成分第44-46页
  3.5.1 茶多糖的基本组成成分第44-45页
  3.5.2 茶多糖的紫外-可见光谱分析第45页
  3.5.3 单糖组分的分析第45-46页
  3.5.4 小结第46页
 3.6 边茶组分的分析第46-50页
  3.6.1 不同加工工序主要品质成分含量第46-48页
  3.6.2 不同加工工序主要微量元素含量第48-49页
  3.6.3 小结第49-50页
4 讨论与结论第50-54页
 4.1 讨论第50-53页
  4.1.1 浸提条件的确定第50页
  4.1.2 纯化条件的确定第50-51页
  4.1.3 茶多糖提取原料的选择第51页
  4.1.4 微量元素与茶多糖药理作用关系第51-52页
  4.1.5 四川边茶组分变化与加工工序的关系第52-53页
 4.2 结论第53-54页
参考文献第54-56页
致谢第56-57页
在校期间发表的论文第57页

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