| 致谢 | 第1-5页 |
| 目录 | 第5-7页 |
| 图版目录 | 第7-8页 |
| 表格目录 | 第8-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 第一部分 文献综述 | 第15-31页 |
| ·组织培养体系及再生技术 | 第15-17页 |
| ·高羊茅组织培养及植株再生 | 第17-18页 |
| ·遗传转化研究进展 | 第18-26页 |
| ·遗传转化概述 | 第18-19页 |
| ·遗传转化系统 | 第19-26页 |
| ·高羊茅遗传转化研究进展 | 第26-30页 |
| ·转化的受体材料 | 第26-27页 |
| ·转化方法 | 第27-29页 |
| ·农杆菌遗传转化影响因子 | 第29-30页 |
| ·本文研究的目的和意义 | 第30-31页 |
| 第二部分 高羊茅种子的预处理及萌发情况 | 第31-45页 |
| ·实验材料和方法 | 第31-33页 |
| ·实验材料 | 第31页 |
| ·主要实验仪器 | 第31页 |
| ·实验方法 | 第31-33页 |
| ·结果与分析 | 第33-43页 |
| ·供试各品种常规发芽率的情况 | 第33页 |
| ·未切割培养发芽的情况 | 第33-36页 |
| ·横向切割培养发芽 | 第36-39页 |
| ·纵向切割培养发芽 | 第39-43页 |
| ·结论与讨论 | 第43-45页 |
| 第三部分 贵州本地高羊茅组织培养及植株再生 | 第45-64页 |
| ·材料与方法 | 第45-48页 |
| ·材料 | 第45页 |
| ·主要实验仪器 | 第45-46页 |
| ·实验方法 | 第46-47页 |
| ·培养基 | 第47-48页 |
| ·结果与分析 | 第48-62页 |
| ·基本培养基对愈伤组织诱导的影响 | 第48-49页 |
| ·愈伤组织诱导的外观形态差异 | 第49-50页 |
| ·不同品种之间愈伤组织诱导率的差异 | 第50-51页 |
| ·激素2，4-D、6-BA不同浓度组合对愈伤组织诱导的影响 | 第51-57页 |
| ·不同浓度6-BA对愈伤组织分化的影响 | 第57-61页 |
| ·生根培养及幼苗的移栽 | 第61-62页 |
| ·结论与讨论 | 第62-64页 |
| 第四部分 农杆菌介导遗传转化的研究 | 第64-85页 |
| ·材料和方法 | 第64-67页 |
| ·材料 | 第64页 |
| ·主要实验仪器 | 第64页 |
| ·主要试剂 | 第64页 |
| ·实验方法 | 第64-66页 |
| ·培养基 | 第66-67页 |
| ·结果与分析 | 第67-82页 |
| ·预培养时间对愈伤组织转化效率的影响 | 第67-70页 |
| ·菌液浓度对愈伤组织转化效率(%)的影响 | 第70-72页 |
| ·浸染时间对愈伤组织转化效率(%)的影响 | 第72-74页 |
| ·共培养pH值对愈伤组织基因转化效率(%)的影响 | 第74-78页 |
| ·共培养时间对愈伤组织转化效率(%)的影响 | 第78-80页 |
| ·筛选、分化及移栽 | 第80-82页 |
| ·结论与讨论 | 第82-84页 |
| ·总论 | 第84-85页 |
| 主要参考文献 | 第85-92页 |
| 附录 | 第92-93页 |