| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-14页 |
| 缩略词表 | 第14-15页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 第一部分 IL-6、VEGF在膝骨关节炎患者关节滑膜和滑液中的表达及其意义 | 第18-30页 |
| 1.材料和方法 | 第18-22页 |
| ·研究对象 | 第18-19页 |
| ·主要仪器 | 第19页 |
| ·主要试剂 | 第19-20页 |
| ·标本的收集和处理 | 第20页 |
| ·双抗体夹心ABC——ELISA法检测关节液中IL-6及VEGF水平 | 第20-21页 |
| ·滑膜组织切片病理学研究 | 第21-22页 |
| ·统计学方法 | 第22页 |
| 2.结果 | 第22-25页 |
| ·关节滑液ELISA法检测结果 | 第22-23页 |
| ·滑膜组织切片染色结果 | 第23-25页 |
| 3.讨论 | 第25-29页 |
| ·IL-6与OA | 第26-27页 |
| ·血管内皮细胞生长因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)与OA | 第27-29页 |
| 结论 | 第29-30页 |
| 第二部分 IL-6对体外培养的滑膜成纤维样细胞生物学行为的影响 | 第30-45页 |
| 1.材料与方法 | 第30-37页 |
| ·主要仪器 | 第30-31页 |
| ·主要试剂 | 第31页 |
| ·滑膜成纤维样细胞培养 | 第31-33页 |
| ·人关节滑膜成纤维样细胞(FLS)的鉴定 | 第33页 |
| ·细胞干预方案 | 第33页 |
| ·细胞总RNA提取和定量 | 第33-34页 |
| ·RT-PCR检测IL-6诱导的FLS中VEGF、MMP-13的mRNA表达 | 第34-37页 |
| ·ELISA法检测上清液中VEGF、MMP-13的含量 | 第37页 |
| ·统计学分析 | 第37页 |
| 2.结果 | 第37-41页 |
| ·滑膜成纤维样细胞的鉴定 | 第37-39页 |
| ·RT-PCR检测IL-6诱导的FLS中VEGF、MMP-13的mRNA表达 | 第39-40页 |
| ·ELISA法检测IL-6诱导的FLS上清液中VEGF、MMP-13的含量 | 第40-41页 |
| 3.讨论 | 第41-44页 |
| ·人关节滑膜成纤维样细胞的培养 | 第41-42页 |
| ·VEGF、MMP-13在白细胞介素-6(IL-6)诱导的滑膜成纤维样细胞(FLS)中表达的意义 | 第42-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 第三部分 p38MAPK抑制剂对滑膜成纤维样细胞表达VEGF、MMP-13的影响及应用前景分析 | 第45-59页 |
| 1.材料与方法 | 第46-52页 |
| ·主要仪器 | 第46页 |
| ·主要试剂 | 第46页 |
| ·滑膜成纤维样细胞干预方案 | 第46-47页 |
| ·细胞蛋白提取和定量 | 第47-48页 |
| ·Western-blot分析IL-6、IL-1诱导的FLS中VEGF、MMP-13的蛋白表达 | 第48-52页 |
| ·RT-PCR检测IL-6、IL-1诱导的FLS中VEGF、MMP-13的mRNA表达 | 第52页 |
| 2.结果 | 第52-56页 |
| ·p38MAPK选择性抑制剂SB220025处理的FLS形态学的变化 | 第52-53页 |
| ·不同浓度的SB220025对IL-1和IL-6诱导的FLS合成VEGF、MMP-13的影响 | 第53-55页 |
| ·SB220025、地塞米松、美洛昔康对IL-1、IL-6诱导的FLS中VEGF、MMP-13表达的作用对比 | 第55-56页 |
| 3.讨论 | 第56-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 综述(一) | 第65-77页 |
| 综述(二) | 第77-92页 |
| 致谢 | 第92-93页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第93页 |
