| 摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-19页 |
| 缩略词 | 第19-20页 |
| 前言 | 第20-23页 |
| 第一部分 微管蛋白在大鼠颞叶癫癎突触后致密物中的表达变化 | 第23-45页 |
| ·材料与方法 | 第23-34页 |
| ·主要的试剂 | 第23-24页 |
| ·仪器 | 第24页 |
| ·溶液配制 | 第24-28页 |
| ·实验方法 | 第28-34页 |
| ·结果 | 第34-39页 |
| ·氯化锂-匹罗卡品颞叶癫癎大鼠模型 | 第34-35页 |
| ·PSD纯度的检测 | 第35页 |
| ·PSD蛋白western blot半定量分析的内参确定 | 第35-37页 |
| ·蛋白α-tubulin在PSD的表达检测 | 第37-38页 |
| ·蛋白β-tubulin在PSD的表达检测 | 第38-39页 |
| ·讨论 | 第39-44页 |
| ·氯化锂—匹罗卡品致痫动物模型 | 第39-40页 |
| ·颞叶癫癎PSD相关蛋白Western blot分析的内参确定 | 第40-41页 |
| ·PSD微管蛋白与突触 | 第41-42页 |
| ·Tubulin可能是SE后导致程序化死亡的重要分子之一 | 第42-43页 |
| ·Tubulin参与海马苔藓纤维出芽 | 第43-44页 |
| ·结论 | 第44-45页 |
| 第二部分 突触后致密物微管蛋白对颞叶癫癎自发发作的影响 | 第45-63页 |
| ·材料与方法 | 第45-56页 |
| ·主要的试剂 | 第45-46页 |
| ·仪器 | 第46-47页 |
| ·溶液配制 | 第47-50页 |
| ·实验方法 | 第50-56页 |
| ·结果 | 第56-60页 |
| ·LiC1-PILO动物模型 | 第56-57页 |
| ·PSD纯度的检验 | 第57页 |
| ·尼氏染色 | 第57-58页 |
| ·蛋白α-tubulin在PSD的表达检测 | 第58-59页 |
| ·蛋白β-tubulin在PSD的表达检测 | 第59-60页 |
| ·讨论 | 第60-62页 |
| ·匹罗卡品致痫大鼠自发发作 | 第60-61页 |
| ·SE后神经元死亡与反复自发发作 | 第61-62页 |
| ·结论 | 第62-63页 |
| 第三部分 干预微管稳定性对颞叶癫癇形成的影响 | 第63-75页 |
| ·材料与方法 | 第63-69页 |
| ·主要的试剂 | 第63页 |
| ·仪器 | 第63-64页 |
| ·溶液配制 | 第64页 |
| ·实验方法 | 第64-69页 |
| ·结果 | 第69-74页 |
| ·海马注射秋水仙碱最适剂量的确定 | 第69-70页 |
| ·海马注射紫杉醇最适剂量的确定 | 第70-71页 |
| ·行为学观察及脑电图结果 | 第71页 |
| ·LiC1-PILO动物模型 | 第71-73页 |
| ·β-tubulin的表达 | 第73-74页 |
| ·讨论 | 第74页 |
| ·结论 | 第74-75页 |
| 附图 | 第75-87页 |
| 参考文献 | 第87-96页 |
| 综述 | 第96-127页 |
| 致谢 | 第127-128页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文 | 第128页 |
