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软坚清脉颗粒保护下肢缺血性血管损伤的实验研究

主要缩略词表第8-9页
中文摘要第9-11页
ABSTRACT第11-14页
引言第15-17页
第一章 软坚清脉颗粒对下肢缺血性小鼠模型的体内实验研究第17-27页
    1 实验材料第17-18页
        1.1 实验药品来源第17页
        1.2 动物第17页
        1.3 试剂第17页
        1.4 设备第17-18页
    2 实验方法第18-21页
        2.1 小鼠造模分组及给药饲养第18页
        2.2 下肢缺血性小鼠实验模型构建(详见图1)第18页
        2.3 造模后分组给药第18-19页
        2.4 动物血清样本采集第19页
        2.5 免疫荧光染色检测VEGF和 CD31第19-20页
        2.6 ELISA检测血清中VEGF和 PDGF的表达第20-21页
        2.7 统计学分析第21页
    3 实验结果第21-24页
        3.1 软坚清脉颗粒对下肢缺血性小鼠下肢血流检查第21-22页
        3.2 软坚清脉颗粒对下肢缺血性小鼠VEGF和 CD31 的免疫荧光染色图片第22-23页
        3.3 软坚清脉颗粒对下肢缺血性小鼠血清中VEGF和PDGF检测第23-24页
    4 讨论与分析第24-27页
        4.1 现代医学研究与ASO的相关因素第25-26页
        4.2 软坚清脉颗粒对血管内皮新生和保护作用第26-27页
第二章 软坚清脉颗粒对血管内皮细胞缺氧损伤的保护作用第27-42页
    1 实验材料第27-28页
        1.1 药物第27页
        1.2 动物第27页
        1.3 细胞株及培养第27页
        1.4 试剂第27-28页
        1.5 设备第28页
    2 实验方法第28-32页
        2.1 含药血清制备第28-29页
        2.2 分组、干预与造模第29页
        2.3 细胞培养第29页
        2.4 MTT实验检测细胞增殖情况第29-30页
        2.5 Hoechst33342和Annexin V/PI染色检测细胞凋亡第30页
        2.6 Rho123 染色检测线粒体膜电位(MMP)第30页
        2.7 RT-PCR细胞因子检测第30-31页
        2.8 Western blot检测TL1A和 Caspase-3 蛋白表达第31-32页
        2.9 统计学分析第32页
    3 实验结果第32-37页
        3.1 对正常HUVECs细胞活力的影响第32页
        3.2 对缺氧诱导下HUVECs细胞活力的影响第32-33页
        3.3 对缺氧诱导下HUVECs细胞凋亡的影响第33-34页
        3.4 对缺氧诱导下HUVECs细胞MMP的影响第34-35页
        3.5 对缺氧诱导下HUVECs细胞TL1A和 Caspase-3 m RNA表达的影响第35-36页
        3.6 对缺氧诱导下HUVECs细胞TL1A和 Caspase-3 蛋白表达的影响第36-37页
    4 讨论与分析第37-42页
        4.1 传统中医对ASO的认知第37-38页
        4.2 中医中药治疗ASO第38-40页
        4.3 奚氏“软坚清脉”中药复方方药分析第40-41页
        4.4 软坚清脉颗粒对血管内皮细胞缺氧损伤的保护作用研究第41-42页
结论第42-43页
致谢第43-44页
参考文献第44-48页
附录1 文献综述 中医治疗动脉硬化闭塞症的临床研究进展第48-56页
    参考文献第53-56页
附录2 在校期间已发表论文第56-68页

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