| 摘要 | 第1-13页 |
| Abstract | 第13-16页 |
| 第一章 引言 | 第16-32页 |
| 1 植物遗传转化研究进展 | 第16-19页 |
| ·植物遗传转化方法简述 | 第16页 |
| ·农杆菌介导的遗传转化机理 | 第16-17页 |
| ·影响农杆菌介导遗传转化的因素 | 第17-18页 |
| ·受体系统 | 第17-18页 |
| ·农杆菌菌株类型 | 第18页 |
| ·抗生素的选择 | 第18页 |
| ·培养方法与培养条件 | 第18页 |
| ·农杆菌介导的遗传转化在果树中的应用 | 第18-19页 |
| 2 植物离体保存研究进展 | 第19-20页 |
| ·植物离体保存技术的优点 | 第19页 |
| ·植物离体保存方法简介 | 第19页 |
| ·限制生长保存 | 第19页 |
| ·低温保存 | 第19页 |
| ·超低温保存 | 第19页 |
| ·植物离体保存机理研究 | 第19-20页 |
| 3 ACS 和ACO 基因研究进展 | 第20-25页 |
| ·乙烯的生物合成 | 第20-21页 |
| ·ACS 基因研究概况 | 第21-22页 |
| ·ACS 基因的克隆 | 第21页 |
| ·ACS 基因的表达 | 第21-22页 |
| ·ACS 基因在植物遗传转化中的应用 | 第22页 |
| ·ACO 基因研究进展 | 第22-23页 |
| ·ACO 基因的克隆 | 第22-23页 |
| ·ACO 基因的表达 | 第23页 |
| ·乙烯的生理作用 | 第23-25页 |
| ·乙烯与果实成熟 | 第23页 |
| ·乙烯与细胞衰老 | 第23-24页 |
| ·乙烯与植物离体培养 | 第24-25页 |
| 4 枇杷生物技术研究进展 | 第25-31页 |
| ·枇杷离体培养研究进展 | 第25-26页 |
| ·茎尖培养 | 第25页 |
| ·胚培养 | 第25页 |
| ·胚乳培养 | 第25页 |
| ·原生质体培养 | 第25-26页 |
| ·花药培养 | 第26页 |
| ·枇杷种质资源离体保存研究进展 | 第26页 |
| ·枇杷分子生物学研究进展 | 第26-30页 |
| ·核酸提取 | 第26-27页 |
| ·分子标记 | 第27-28页 |
| ·基因克隆 | 第28-30页 |
| ·枇杷遗传转化研究进展 | 第30-31页 |
| 5 本研究的意义和内容 | 第31-32页 |
| ·本研究的意义 | 第31页 |
| ·本研究的内容 | 第31-32页 |
| 第二章 枇杷离体培养 | 第32-49页 |
| 第一节 枇杷胚性培养物的诱导与继代保持 | 第32-40页 |
| 1 材料与方法 | 第32-33页 |
| ·材料 | 第32-33页 |
| ·方法 | 第33页 |
| ·培养条件 | 第33页 |
| 2 结果与分析 | 第33-39页 |
| ·枇杷花药培养与愈伤组织诱导 | 第33-38页 |
| ·不同继代方式对枇杷幼胚胚性培养物的影响 | 第38-39页 |
| 3 讨论 | 第39-40页 |
| ·正交试验设计筛选出影响枇杷花药愈伤组织诱导的关键因素 | 第39页 |
| ·影响枇杷幼胚胚性培养物长期继代保持的因素 | 第39-40页 |
| 第二节 枇杷幼胚培养与试管苗获得 | 第40-49页 |
| 1 材料与方法 | 第40-41页 |
| ·试验材料 | 第40页 |
| ·方法 | 第40-41页 |
| ·培养条件 | 第41页 |
| 2 结果与分析 | 第41-48页 |
| ·影响4 个枇杷品种幼胚萌发的因素 | 第41-45页 |
| ·4 个枇杷品种试管苗的增殖培养 | 第45-47页 |
| ·4 个枇杷品种试管苗的生根培养 | 第47-48页 |
| 3 讨论 | 第48-49页 |
| ·不同枇杷品种幼胚培养具有相似的规律 | 第48页 |
| ·激素在枇杷幼胚培养中的作用 | 第48-49页 |
| 第三章 枇杷胚性培养物 ACS 和 ACO 基因克隆及遗传转化 | 第49-125页 |
| 第一节 枇杷胚性培养物ACS 基因克隆 | 第49-92页 |
| 1 材料与方法 | 第49-56页 |
| ·材料 | 第49-50页 |
| ·方法 | 第50-56页 |
| 2 结果与分析 | 第56-90页 |
| ·枇杷胚性培养物总RNA 和叶片基因组DNA 的提取效果 | 第56-58页 |
| ·枇杷胚性培养物ACS 基因cDNA 保守区的克隆 | 第58-62页 |
| ·枇杷胚性培养物ACS 基因cDNA 开放阅读框（ORF）的克隆 | 第62-64页 |
| ·枇杷 ACS 基因序列分析 | 第64-67页 |
| ·枇杷两个ACS 基因序列的比较分析 | 第67-71页 |
| ·枇杷 ACS 基因的生物信息学分析 | 第71-84页 |
| ·枇杷基因组DNA ACS 基因克隆 | 第84-90页 |
| 3 讨论 | 第90-92页 |
| ·枇杷两个ACS 基因之间的关系 | 第90-91页 |
| ·枇杷 ACS 基因的功能 | 第91页 |
| ·枇杷 ACS 基因内含子的作用 | 第91-92页 |
| 第二节 枇杷胚性培养物ACO 基因克隆 | 第92-118页 |
| 1 材料与方法 | 第92-96页 |
| ·材料 | 第92页 |
| ·方法 | 第92-96页 |
| 2 结果与分析 | 第96-117页 |
| ·枇杷胚性培养物ACO 基因cDNA 保守区的克隆 | 第96-100页 |
| ·枇杷胚性培养物ACO 基因cDNA 的3’RACE 克隆结果 | 第100-101页 |
| ·枇杷胚性培养物ACO 基因cDNA 的开放阅读框（ORF）克隆结果 | 第101-102页 |
| ·枇杷胚性培养物ACO 基因全长序列拼接 | 第102-103页 |
| ·枇杷 ACO 基因序列分析 | 第103-105页 |
| ·枇杷 ACO 基因的生物信息学分析 | 第105-112页 |
| ·枇杷基因组DNA ACO 基因克隆 | 第112-117页 |
| 3 讨论 | 第117-118页 |
| ·枇杷 ACO 基因cDNA 全长和DNA 全长的获得 | 第117页 |
| ·枇杷 ACO 基因的功能 | 第117-118页 |
| 第三节 ACS 反义基因转化枇杷胚状体 | 第118-125页 |
| 1 材料与方法 | 第118-120页 |
| ·材料 | 第118-119页 |
| ·方法 | 第119-120页 |
| 2 结果与分析 | 第120-123页 |
| ·GUS 染色结果情况 | 第120页 |
| ·不同因素对GUS 瞬时表达率的影响 | 第120-123页 |
| 3 讨论 | 第123-125页 |
| ·枇杷胚状体GUS 瞬时表达率的主要影响因素 | 第123-124页 |
| ·根癌农杆菌与植物细胞的相互作用是遗传转化的关键 | 第124页 |
| ·建立枇杷胚状体遗传转化体系的意义 | 第124-125页 |
| 第四章 枇杷试管苗离体种质保存研究 | 第125-134页 |
| 第一节 枇杷试管苗离体种质保存方法探讨 | 第125-128页 |
| 1 材料与方法 | 第125-126页 |
| 2 结果与分析 | 第126-128页 |
| 3 讨论 | 第128页 |
| 第二节 枇杷试管苗离体种质保存 | 第128-134页 |
| 1 材料与方法 | 第128-129页 |
| ·试验材料 | 第128-129页 |
| ·方法 | 第129页 |
| ·培养条件 | 第129页 |
| 2 结果与分析 | 第129-133页 |
| ·22 份枇杷种质资源的幼胚萌发 | 第129页 |
| ·22 份枇杷种质资源的离体保存 | 第129-131页 |
| ·长期保存的枇杷种质资源生长情况 | 第131-133页 |
| 3 讨论 | 第133-134页 |
| 第五章 小结 | 第134-137页 |
| 1 枇杷胚性培养物的诱导与继代保持 | 第134页 |
| 2 枇杷幼胚培养与试管苗获得 | 第134-135页 |
| 3 枇杷胚性培养物中ACS 基因的克隆 | 第135页 |
| 4 枇杷胚性培养物中ACO 基因的克隆 | 第135-136页 |
| 5 ACS 反义基因转化枇杷胚状体 | 第136页 |
| 6 枇杷试管苗离体种质保存研究 | 第136-137页 |
| 参考文献 | 第137-147页 |
| 附录 1 图版及图版说明 | 第147-156页 |
| 附录 2 枇杷 EjACS-1 基因（cDNA）序列登录 GenBank 信息 | 第156-159页 |
| 附录 3 枇杷 EjACS-2 基因（cDNA）序列登录 GenBank 信息 | 第159-161页 |
| 附录 4 枇杷 ACS 基因（DNA）序列登录 GenBank 信息 | 第161-164页 |
| 附录 5 枇杷 EjACO-1 基因（cDNA）序列登录 GenBank 信息 | 第164-166页 |
| 附录 6 枇杷 EjACO-2 基因（cDNA）序列登录 GenBank 信息 | 第166-168页 |
| 附录 7 枇杷 ACO 基因（DNA）序列登录 GenBank 信息 | 第168-170页 |
| 致谢 | 第170页 |
