| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 1 前言 | 第12-28页 |
| ·鱼类多倍体育种 | 第12-15页 |
| ·鱼类多倍体的人工诱导 | 第13-14页 |
| ·三倍体鱼类育种的意义 | 第14-15页 |
| ·硬骨鱼类卵巢发育的研究 | 第15-17页 |
| ·硬骨鱼类卵巢的结构及特点 | 第15-16页 |
| ·硬骨鱼类卵子发生 | 第16-17页 |
| ·鱼类卵黄蛋白原的研究现状 | 第17-19页 |
| ·鱼类卵黄蛋白原的结构 | 第17-18页 |
| ·鱼类卵黄蛋白原的生物学功能 | 第18-19页 |
| ·鱼类sox9 基因的研究现状 | 第19-20页 |
| ·硬骨鱼类的sox9 基因 | 第19页 |
| ·虹鳟的sox9 基因 | 第19-20页 |
| ·鱼类Dmrt1 基因的研究现状 | 第20-22页 |
| ·实时荧光定量PCR | 第22-27页 |
| ·FQ-PCR 技术的两个重要概念 | 第22页 |
| ·FQ-PCR 技术作用的原理 | 第22-23页 |
| ·FQ-PCR 的两种定量形式 | 第23-24页 |
| ·FQ-PCR 技术的应用 | 第24-26页 |
| ·存在的问题及应用前景 | 第26页 |
| ·FQ-PCR 计算基因表达差异的方法 | 第26-27页 |
| ·研究的目的与意义 | 第27页 |
| ·研究内容 | 第27-28页 |
| 2 材料与方法 | 第28-35页 |
| ·试验用鱼 | 第28-29页 |
| ·试验用鱼的诱导及饲养 | 第28页 |
| ·倍性的鉴定 | 第28-29页 |
| ·样品采集 | 第29页 |
| ·试验器材 | 第29页 |
| ·试验试剂及配制方法 | 第29-30页 |
| ·工具酶及试剂盒 | 第30页 |
| ·试验方法 | 第30-34页 |
| ·性腺组织学观察 | 第30页 |
| ·性腺组织总RNA 的提取 | 第30-31页 |
| ·总RNA 吸光度测量 | 第31页 |
| ·总RNA 琼脂糖凝胶电泳 | 第31页 |
| ·总RNA 反转录成cDNA | 第31-32页 |
| ·FQ-PCR 标准曲线制备 | 第32-33页 |
| ·目标基因的FQ-PCR 反应 | 第33-34页 |
| ·试验数据的统计分析 | 第34-35页 |
| 3 结果与分析 | 第35-53页 |
| ·卵巢发育的组织学观察 | 第35-37页 |
| ·标准曲线的制备 | 第37-40页 |
| ·总RNA 的提取和质量检测 | 第37页 |
| ·标准曲线制备 | 第37-40页 |
| ·目标基因的FQ-PCR 反应 | 第40-53页 |
| ·Vg 基因real-time RT-PCR 检测 | 第40-43页 |
| ·sox9a2 基因real-time RT-PCR 检测 | 第43-45页 |
| ·sox9 基因real-time RT-PCR 检测 | 第45-47页 |
| ·Dmrt1 基因real-time RT-PCR 检测 | 第47-49页 |
| ·mRNA 表达计算与分析 | 第49-53页 |
| 4 讨论 | 第53-60页 |
| ·三倍体鱼类卵巢发育的阻滞现象 | 第53页 |
| ·Vg 基因的表达 | 第53-54页 |
| ·sox9 和sox9a2 基因的表达 | 第54-55页 |
| ·Dmrt1 基因的表达 | 第55-56页 |
| ·激素诱导Dmrt1 基因的表达 | 第55页 |
| ·Dmrt1 基因在性别分化中的位置 | 第55-56页 |
| ·三倍体雌性虹鳟的雄性化现象 | 第56-57页 |
| ·FQ-PCR 的影响因素 | 第57-59页 |
| ·引物的设计 | 第57-58页 |
| ·试剂的选择 | 第58页 |
| ·总RNA 的提取 | 第58-59页 |
| ·研究展望 | 第59-60页 |
| 5 结论 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-75页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第75页 |
