中文摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-10页 |
缩略语/符号说明Ⅺ | 第14-16页 |
前言 | 第16-23页 |
研究现状、成果 | 第16-21页 |
研究目的、方法 | 第21-23页 |
对象和方法 | 第23-42页 |
1 实验对象 | 第23页 |
2 实验试剂 | 第23-28页 |
2.1 试剂 | 第23-25页 |
2.2 实验试剂配制 | 第25-28页 |
3 实验仪器和设备 | 第28-29页 |
4 实验耗材 | 第29-30页 |
5 方法 | 第30-42页 |
5.1 构建STZ诱导的1型糖尿病动物模型 | 第30页 |
5.2 检测大鼠24h尿蛋白 | 第30页 |
5.3 大鼠肾脏标本取材 | 第30页 |
5.4 石蜡组织切片制备 | 第30-31页 |
5.5 苏木素-伊红染色(HE染色) | 第31页 |
5.6 PAS染色 | 第31页 |
5.7 大鼠肾脏组织免疫组织化学染色 | 第31-32页 |
5.8 HK2细胞及大鼠肾小球系膜细胞的培养 | 第32-34页 |
5.9 HK2细胞的分组与处理 | 第34页 |
5.10 大鼠肾小球系膜细胞的分组和处理 | 第34页 |
5.11 HK2细胞、大鼠肾小球系膜细胞和大鼠肾脏组织总蛋白的提取及Western Blot | 第34-38页 |
5.11.1 HK2细胞及肾小球系膜细胞总蛋白的提取 | 第34-35页 |
5.11.2 大鼠肾脏组织总蛋白的提取 | 第35页 |
5.11.3 Thermo BCA kit蛋白定量 | 第35-36页 |
5.11.4 蛋白变性 | 第36页 |
5.11.5 聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第36-38页 |
5.12 HK2细胞及大鼠肾小球系膜细胞的Syk-siRNA序列的转染 | 第38页 |
5.13 大鼠肾脏组织总RNA的提取及RT-PCR | 第38-41页 |
5.13.1 大鼠肾脏组织总RNA的提取 | 第38-39页 |
5.13.2 RNA逆转录 | 第39-40页 |
5.13.3 普通RT-PCR | 第40-41页 |
5.14 流式细胞术 | 第41页 |
5.15 统计学分析 | 第41-42页 |
结果 | 第42-61页 |
1 STZ诱导的1型糖尿病SD大鼠动物模型的构建 | 第42页 |
2 SD大鼠糖尿病肾病动物模型鉴定 | 第42-43页 |
3 Con组和DN组大鼠肾脏组织HE和PAS染色 | 第43-44页 |
4 大鼠肾脏组织中NLRP3炎症小体及IL-1β的表达 | 第44-48页 |
5 大鼠肾脏组织中p-Syk、p-JNK的表达 | 第48-50页 |
6 高糖诱导HK2细胞中NLRP3炎症小体及p-JNK蛋白表达增加 | 第50-51页 |
7 高糖诱导的HK2细胞中p-Syk的表达 | 第51-52页 |
8 JNK抑制剂SP抑制了高糖诱导的HK2细胞中NLRP3炎症小体蛋 | 第52页 |
9 Syk抑制剂BAY61-3606阻断了高糖诱导的HK2细胞NLRP3炎症小体的活化以及IL-1β的成熟 | 第52-54页 |
10 BAY61-3606阻断了糖诱导的大鼠肾小球系膜细胞NLRP3炎症小体的活化以及IL-1β的成熟 | 第54-55页 |
11 Syk-siRNA干扰对高糖诱导的HK2细胞JNK磷酸化及NLRP3信号通路活化的影响 | 第55-57页 |
12 Syk-siRNA干扰对高糖诱导的大鼠肾小球系膜细胞JNK磷酸化及NLRP3信号通路活化的影响 | 第57-58页 |
13 Syk参与了高糖诱导的HK2细胞的凋亡过程 | 第58-61页 |
讨论 | 第61-65页 |
结论 | 第65-66页 |
参考文献 | 第66-77页 |
发表论文和参加科研情况 | 第77页 |
在学期间参加科研情况 | 第77-78页 |
综述 糖尿病肾病的研究进展 | 第78-92页 |
综述参考文献 | 第84-92页 |
致谢 | 第92-93页 |
个人简历 | 第93页 |