| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 缩略语对照表 | 第7-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-28页 |
| 1.1 低密度脂蛋白受体家族概述 | 第10-13页 |
| 1.1.1 低密度脂蛋白受体家族 | 第10-11页 |
| 1.1.2 LRP4简介 | 第11-12页 |
| 1.1.3 LRP4的生理作用 | 第12-13页 |
| 1.2 Wnt信号通路 | 第13-16页 |
| 1.2.1 Wnt信号通路的概述 | 第13-14页 |
| 1.2.2 非经典的Wnt信号通路 | 第14-15页 |
| 1.2.3 经典的Wnt信号通路(CanonicalWnt/β-cateninpathway) | 第15-16页 |
| 1.3 Notch信号通路 | 第16-18页 |
| 1.3.1 Notch信号通路的简介 | 第16-17页 |
| 1.3.2 Notch信号通路的生理作用 | 第17页 |
| 1.3.3 Notch信号通路工作机制 | 第17-18页 |
| 1.4 斑马鱼----出色的动物模型 | 第18-24页 |
| 1.4.1 斑马鱼简介 | 第18-19页 |
| 1.4.2 斑马鱼作为模式动物的优势 | 第19页 |
| 1.4.3 斑马鱼的胚胎发育 | 第19-20页 |
| 1.4.4 斑马鱼的骨骼发育 | 第20-22页 |
| 1.4.5 斑马鱼的肾脏发育 | 第22-24页 |
| 1.5 Morpholino | 第24-25页 |
| 1.6 立题依据与研究意义 | 第25-28页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第28-46页 |
| 2.1 实验材料 | 第28-34页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第28页 |
| 2.1.2 菌株 | 第28页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第28-29页 |
| 2.1.4 实验材料和试剂 | 第29-34页 |
| 2.1.5 实验耗材 | 第34页 |
| 2.2 实验方法 | 第34-46页 |
| 2.2.1 利用原位杂交技术检测lrp4的时空表达情况 | 第34-35页 |
| 2.2.2利用反义寡核苷酸技术敲低lrp4 | 第35-37页 |
| 2.2.3 在lrp4morphrants中对Wnt信号通路进行研究 | 第37-42页 |
| 2.2.4 在lrp4morphrants中对Notch信号通路进行研究 | 第42-43页 |
| 2.2.5 标记基因的表达差异 | 第43-45页 |
| 2.2.6 用阿利新蓝染色法观察morphants的发育情况 | 第45-46页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第46-58页 |
| 3.1 lrp4的时空表达情况 | 第46页 |
| 3.2 lrp4morphants的表型分析 | 第46-49页 |
| 3.2.1 lrp4Splicingmorphants的表型分析 | 第46-48页 |
| 3.2.2 lrp4ATGmorphants的表型分析 | 第48-49页 |
| 3.3 在lrp4morphrants中对Wnt信号通路进行研究 | 第49-50页 |
| 3.3.1 qRT-PCR检测Wnt信号通路 | 第49页 |
| 3.3.2 原位杂交检测Wnt信号通路 | 第49-50页 |
| 3.4 在lrp4morhpants中对Notch信号通路进行研究 | 第50-52页 |
| 3.4.1 qRT-PCR检测Notch信号通路 | 第50-51页 |
| 3.4.2 原位杂交检测Notch信号通路 | 第51-52页 |
| 3.5 标记基因的检测 | 第52-55页 |
| 3.5.1 检测骨骼标记基因 | 第52-54页 |
| 3.5.2 检测肾脏发育标记基因 | 第54-55页 |
| 3.6 阿利新蓝染色法观察morphants的发育情况 | 第55-56页 |
| 总结 | 第56-58页 |
| 第四章 讨论与展望 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-70页 |
| 致谢 | 第70-72页 |
| 攻读硕士学位期间取得的科研成果 | 第72-73页 |
