| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第15-41页 |
| 1.1 CBT-Cys点击缩合反应简介 | 第15-21页 |
| 1.1.1 CBT-Cys点击反应用于蛋白标记 | 第16-17页 |
| 1.1.2 CBT-Cys点击反应用于分子影像 | 第17-19页 |
| 1.1.3 CBT-Cys点击反应用于纳米结构自组装 | 第19-20页 |
| 1.1.4 CBT-Cys点击反应用于癌症治疗 | 第20-21页 |
| 1.2 超分子生物功能材料简介 | 第21-23页 |
| 1.3 免疫系统和免疫学简介 | 第23-28页 |
| 1.4 超分子自组装纳米材料在免疫学上的应用 | 第28-31页 |
| 1.5 总结和展望 | 第31-32页 |
| 1.6 论文的选题及主要工作 | 第32-35页 |
| 参考文献 | 第35-41页 |
| 第二章 紫杉醇超分子自组装纳米粒子激活免疫系统抵抗癌症 | 第41-79页 |
| 2.1 引言 | 第41-43页 |
| 2.2 实验方法 | 第43-52页 |
| 2.2.1 试剂及仪器型号 | 第43页 |
| 2.2.2 小鼠 | 第43-44页 |
| 2.2.3 骨髓来源巨噬细胞(BMDMs)培养 | 第44页 |
| 2.2.4 共孵育实验 | 第44页 |
| 2.2.5 黑色素瘤肿瘤模型建立 | 第44-45页 |
| 2.2.6 流式细胞术 | 第45页 |
| 2.2.7 荧光定量聚合酶链式反应(RT-PCR) | 第45-46页 |
| 2.2.8 细胞计数微球阵列实验(CBA) | 第46页 |
| 2.2.9 谷丙转氨酶(ALT)检测 | 第46页 |
| 2.2.10 1以及1-NP的合成及表征 | 第46-52页 |
| 2.3 结果 | 第52-73页 |
| 2.3.1 化合物1的合成与表征以及1-NP的体外自组装 | 第52-55页 |
| 2.3.2 高PTX浓度下1-NP对免疫细胞显示弱细胞毒性 | 第55-56页 |
| 2.3.3 1-NP在体外能够刺激巨噬细胞表面过表达CD11b | 第56-58页 |
| 2.3.4 1-NP使巨噬细胞产生M1型极化而同时能够抑制其M2型极化 | 第58-63页 |
| 2.3.5 1-NP以一种剂量依赖的方式刺激巨噬细胞极化 | 第63-66页 |
| 2.3.6 1-NP较PTX具有更强的抗黑色素瘤效应,且该效应与其对免疫系统的刺激相关 | 第66-67页 |
| 2.3.7 1-NP能够降低PTX在免疫器官和肿瘤部位对免疫细胞的细胞毒性,并且对治疗小鼠未表现出明显毒副作用 | 第67-73页 |
| 2.4 讨论 | 第73-74页 |
| 2.5 本章小结 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-79页 |
| 第三章 自猝灭近红外荧光纳米粒子解组装实现基质金属蛋白酶有效检测 | 第79-95页 |
| 3.1 引言 | 第79-80页 |
| 3.2 实验方法 | 第80-84页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第80-81页 |
| 3.2.2 主要的实验方法 | 第81页 |
| 3.2.3 化合物的合成及表征 | 第81-83页 |
| 3.2.4 MTT实验 | 第83-84页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第84-90页 |
| 3.3.1 设计思路 | 第84页 |
| 3.3.2 利用1-NP对MMP-2活性进行体外NIR荧光检测 | 第84-86页 |
| 3.3.3 在细胞中对MMP-2样活性进行NIR成像 | 第86-88页 |
| 3.3.4 在荷瘤小鼠体内实现针对MMP-2酶样活性的NIR成像 | 第88-90页 |
| 3.4 本章小结 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-95页 |
| 第四章 细胞内共组装有效促进地塞米松的抗炎能力 | 第95-123页 |
| 4.1 引言 | 第95-97页 |
| 4.2 实验方法 | 第97-104页 |
| 4.2.1 常规方法和材料 | 第97页 |
| 4.2.2 水凝胶制备的常规程序 | 第97页 |
| 4.2.3 骨髓来源巨噬细胞(BMDMs)培养 | 第97-98页 |
| 4.2.4 共孵育实验 | 第98页 |
| 4.2.5 流式细胞术 | 第98页 |
| 4.2.6 MTT实验 | 第98-99页 |
| 4.2.7 化合物的合成及表征 | 第99-104页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第104-119页 |
| 4.3.1 1p和Dp能够通过酶控共组装形成新的水凝胶 | 第104-107页 |
| 4.3.2 1p和Dp通过酶控共组装形成的水凝胶具有更强机械性能 | 第107-113页 |
| 4.3.3 1p和Dp的酶控共组装能够明显提升Dex在细胞水平的抗炎能力 | 第113-119页 |
| 4.4 小结与展望 | 第119-121页 |
| 参考文献 | 第121-123页 |
| 第五章 串联酶控自组装和药物缓释增强地塞米松抗肝脏纤维化效应 | 第123-155页 |
| 5.1 引言 | 第123-125页 |
| 5.2 实验方法 | 第125-139页 |
| 5.2.1 实验试剂和仪器 | 第125-126页 |
| 5.2.2 水凝胶制备的常规方法 | 第126页 |
| 5.2.3 骨髓来源巨噬细胞(BMDMs)的培养 | 第126页 |
| 5.2.4 细胞孵育实验 | 第126-127页 |
| 5.2.5 流式细胞术 | 第127页 |
| 5.2.6 MTT实验 | 第127页 |
| 5.2.7 肝脏纤维化模型建立 | 第127-128页 |
| 5.2.8 苏木精尹红(H&E)染色及天狼星红染色 | 第128页 |
| 5.2.9 谷丙转氨酶(ALT)检测 | 第128页 |
| 5.2.10 荧光定量聚合酶链式反应(RT-PCR) | 第128页 |
| 5.2.11 数据分析 | 第128-129页 |
| 5.2.12 化合物的合成及表征 | 第129-139页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第139-151页 |
| 5.3.1 1-Dex-P能够在ALP和酯酶作用下发生串联自组装和药物缓释 | 第139-144页 |
| 5.3.2 1-Dex-P的串联酶控自组装和药物缓释能够提升Dex抗细胞炎症的能力 | 第144-147页 |
| 5.3.3 1-Dex-P的串联酶控自组装和药物缓释能够提升Dex的抗肝脏纤维化能力 | 第147-151页 |
| 5.4 小结与展望 | 第151-152页 |
| 参考文献 | 第152-155页 |
| 致谢 | 第155-157页 |
| 在读期间发表的学术论文与取得的研究成果 | 第157-158页 |
