摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
缩写符号与代号 | 第11-12页 |
第1章 绪论 | 第12-21页 |
1.1 引言 | 第12页 |
1.2 环境雌激素概述 | 第12-13页 |
1.3 DNA的结构特点及生物学特征 | 第13-14页 |
1.4 DNA与小分子的作用方式 | 第14-15页 |
1.4.1 共价结合 | 第14页 |
1.4.2 非共价结合 | 第14-15页 |
1.4.3 剪切作用 | 第15页 |
1.5 DNA与小分子作用主要研究方法 | 第15-19页 |
1.5.1 光谱法 | 第15-17页 |
1.5.2 粘度法 | 第17页 |
1.5.3 原子力显微镜技术 | 第17-18页 |
1.5.4 分子模拟技术 | 第18页 |
1.5.5 化学计量学方法 | 第18-19页 |
1.5.6 琼脂糖凝胶电泳技术 | 第19页 |
1.6 选题意义与研究内容 | 第19-21页 |
1.6.1 选题意义 | 第19-20页 |
1.6.2 研究内容 | 第20-21页 |
第2章 光谱技术测定环境雌激素己烯雌酚与小牛胸腺DNA相互作用 | 第21-29页 |
2.1 引言 | 第21-22页 |
2.2 实验部分 | 第22-23页 |
2.2.1 实验仪器与试剂 | 第22页 |
2.2.2 实验方法 | 第22-23页 |
2.3 结果与讨论 | 第23-27页 |
2.3.1 己烯雌酚对ctDNA紫外光谱的影响 | 第23-24页 |
2.3.2 己烯雌酚与AO的竞争实验及热力学分析 | 第24-25页 |
2.3.3 粘度实验 | 第25-26页 |
2.3.4 圆二色谱研究 | 第26-27页 |
2.3.5 红外光谱分析 | 第27页 |
2.4 本章小结 | 第27-29页 |
第3章 双酚A与ctDNA的结合性质及β–环糊精的影响分析 | 第29-44页 |
3.1 引言 | 第29-30页 |
3.2 实验部分 | 第30-32页 |
3.2.1 仪器与试剂 | 第30-31页 |
3.2.2 实验方法 | 第31-32页 |
3.3 结果与讨论 | 第32-42页 |
3.3.1 BPA与ctDNA相互作用的紫外光谱研究 | 第32-33页 |
3.3.2 MCR–ALS解析扩展的光谱矩阵 | 第33-34页 |
3.3.3 荧光猝灭实验及热力学分析 | 第34-36页 |
3.3.4 BPA与AO的荧光竞争实验 | 第36页 |
3.3.5 熔点实验 | 第36-37页 |
3.3.6 NaCl实验 | 第37页 |
3.3.7 粘度测量 | 第37页 |
3.3.8 圆二色谱实验 | 第37-38页 |
3.3.9 BPA在ctDNA上的结合位点测定 | 第38-39页 |
3.3.10 分子模拟 | 第39页 |
3.3.11 β–环糊精对BPA与ctDNA作用的影响 | 第39-42页 |
3.4 本章小结 | 第42-44页 |
第4章 MCR?ALS结合光谱法检测双酚AF与ctDNA的作用模式 | 第44-54页 |
4.1 引言 | 第44页 |
4.2 实验部分 | 第44-46页 |
4.2.1 仪器与试剂 | 第44-45页 |
4.2.2 实验方法 | 第45-46页 |
4.3 结果与讨论 | 第46-53页 |
4.3.1 BPAF与ctDNA的紫外光谱研究及数据解析 | 第46-48页 |
4.3.2 BPAF荧光猝灭实验 | 第48-49页 |
4.3.3 单双链猝灭实验 | 第49-50页 |
4.3.4 KI荧光猝灭实验 | 第50页 |
4.3.5 盐效应 | 第50页 |
4.3.6 粘度测定 | 第50-51页 |
4.3.7 CD色谱 | 第51-52页 |
4.3.8 FT?IR光谱 | 第52-53页 |
4.3.9 分子模拟实验 | 第53页 |
4.4 本章小结 | 第53-54页 |
第5章 结论与展望 | 第54-56页 |
5.1 结论 | 第54-55页 |
5.2 展望 | 第55-56页 |
致谢 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-65页 |
攻读硕士期间的研究成果 | 第65页 |