| 摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-6页 |
| 英文缩略词表 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 材料与方法 | 第15-23页 |
| 1. 材料试剂与主要的仪器设备 | 第15-17页 |
| 1.1 实验材料与仪器 | 第15页 |
| 1.2 主要的试剂与抗体 | 第15-16页 |
| 1.3 主要的实验仪器 | 第16页 |
| 1.4 试剂的配制 | 第16-17页 |
| 2. 细胞的处理 | 第17-18页 |
| 2.1 细胞的复苏 | 第17-18页 |
| 2.2 细胞的换液与传代 | 第18页 |
| 2.3 细胞的冻存 | 第18页 |
| 3. MTT法测定细胞增殖能力的影响 | 第18-19页 |
| 3.1 实验分组 | 第18-19页 |
| 3.2 实验步骤 | 第19页 |
| 3.3 倒置显微镜观察细胞形态 | 第19页 |
| 4. Western Blot检测分析 | 第19-22页 |
| 4.1 细胞总蛋白的提取 | 第19-20页 |
| 4.2 细胞总蛋白含量的测定(BCA法) | 第20页 |
| 4.3 灌胶与上样 | 第20-21页 |
| 4.4 电泳 | 第21页 |
| 4.5 转膜 | 第21页 |
| 4.6 免疫反应 | 第21页 |
| 4.7 显影、定影 | 第21-22页 |
| 4.8 凝胶图像分析 | 第22页 |
| 5. 细胞凋亡观察与检测 | 第22页 |
| 6. 大鼠种植瘤模型的建立 | 第22页 |
| 7. 统计学分析 | 第22-23页 |
| 结果 | 第23-33页 |
| 1. 氯化钴对细胞形态学的影响 | 第23-24页 |
| 2. 氯化钴对细胞增殖能力的变化 | 第24-25页 |
| 3. 低氧环境下CoCl_2诱导HSP90的表达 | 第25-26页 |
| 4. HSP90抑制剂17-AAG对细胞的增殖抑制作用 | 第26-27页 |
| 5. 17-AAG对Walker256细胞形态的影响 | 第27-28页 |
| 6. 低氧环境下17-AAG对Walker256细胞凋亡的影响 | 第28-30页 |
| 7. 17-AAG对Walker256细胞HSP90和Bcl-2蛋白表达的影响 | 第30-31页 |
| 8. 大鼠种植瘤模型的建立 | 第31页 |
| 9. 给予17-AAG后对照组和给药组大鼠肿瘤的生长情况 | 第31-33页 |
| 讨论 | 第33-38页 |
| 1. HSP90基因结构与功能 | 第33-34页 |
| 2. HSP90在肿瘤中的作用 | 第34-35页 |
| 3. 低氧可诱导HSP90的表达 | 第35页 |
| 4. HSP90抑制剂17-AAG的作用及干预实验 | 第35-38页 |
| 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-42页 |
| 综述：热休克蛋白90与恶性肿瘤的研究进展 | 第42-50页 |
| 1、HSP90的结构及生物学特性 | 第42页 |
| 2、HSP90的功能 | 第42-43页 |
| 3、HSP90与肿瘤的关系 | 第43页 |
| 4、HSP90与肿瘤耐药性 | 第43-44页 |
| 5、HSP90在肿瘤治疗中的应用 | 第44-46页 |
| 6、展望 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
