中文摘要 | 第1-6页 |
英文摘要 | 第6-8页 |
英文名词缩略表 | 第8-10页 |
前言 | 第10-12页 |
第一部分 MIF及其相关因子在不同人宫颈癌细胞株中的表达 | 第12-29页 |
实验一 免疫细胞化学检测MIF及其相关因子在不同宫颈癌细胞株中的表达 | 第12-15页 |
·研究对象 | 第12页 |
·试剂与仪器 | 第12-13页 |
·实验方法 | 第13-14页 |
·统计学分析 | 第14页 |
·实验结果 | 第14-15页 |
实验二 Western blot法检测MIF及相关因子在不同宫颈癌细胞株中的表达 | 第15-22页 |
·研究对象 | 第15页 |
·试剂与仪器 | 第15-18页 |
·实验方法 | 第18-21页 |
·统计学分析 | 第21页 |
·实验结果 | 第21-22页 |
实验三 ELISA测MIF在不同宫颈癌细胞培养上清液中蛋白的浓度 | 第22-24页 |
·研究对象 | 第22页 |
·试剂及仪器 | 第22页 |
·实验方法 | 第22-23页 |
·统计学分析 | 第23页 |
·实验结果 | 第23-24页 |
讨论 | 第24-27页 |
附图 | 第27-29页 |
第二部分 外源性MIF促进宫颈癌细胞株的增殖及各相关因子的蛋白表达 | 第29-40页 |
实验一 MTT检测rhMIF对人宫颈癌细胞株C33A、Siha的促增殖作用 | 第29-32页 |
·细胞株 | 第29页 |
·试剂 | 第29页 |
·仪器 | 第29页 |
·实验方法 | 第29-30页 |
·统计学分析 | 第30页 |
·实验结果 | 第30-32页 |
实验二 免疫细胞化学检测MIF、PI3K、cyclinD1、Ki67在rhMIF刺激后的宫颈癌细胞中的表达 | 第32-33页 |
·细胞株 | 第32页 |
·所需试剂与器材 | 第32页 |
·实验方法 | 第32页 |
·统计学分析 | 第32页 |
·实验结果 | 第32-33页 |
实验三 Western blot法检测MIF、PI3K、CyclinD1、Ki67在rhMIF刺激后的宫颈癌细胞中的表达 | 第33-36页 |
·研究对象 | 第34页 |
·主要试剂 | 第34页 |
·主要仪器 | 第34页 |
·实验方法 | 第34页 |
·统计学处理 | 第34页 |
·实验结果 | 第34-36页 |
讨论 | 第36-38页 |
附图 | 第38-40页 |
第三部分 MIF抑制剂ISO-1抑制宫颈癌细胞株CaSki的增殖活性及蛋白表达 | 第40-49页 |
实验一 MTT检测ISO-1对人宫颈癌细胞CaSki的抑增殖作用 | 第40-42页 |
·研究对象 | 第40页 |
·试剂及仪器 | 第40页 |
·实验方法 | 第40-41页 |
·统计学方法 | 第41页 |
·实验结果 | 第41-42页 |
实验二 免疫细胞化学法检测MIF、PI3K、cyclinDl、Ki67在ISO-1作用后宫颈癌细胞CaSki中的表达 | 第42-43页 |
·研究对象 | 第42页 |
·试剂及仪器 | 第42页 |
·实验方法 | 第42页 |
·实计学方法 | 第42-43页 |
·实验结果 | 第43页 |
实验三 Western blot检测ISO-1抑制人宫颈癌细胞株CaSki中MIF、PI3K、CyclinD1、Ki67的蛋白表达 | 第43-45页 |
·研究究对象 | 第43页 |
·主要试剂与仪器 | 第43页 |
·实验方法 | 第43-44页 |
·统计学处理 | 第44页 |
·实验结果 | 第44-45页 |
实验四 ELISA检测ISO-1刺激后细胞株CaSki培养上清液中MIF的蛋白含量 | 第45-46页 |
·研究对象 | 第45页 |
·主要试剂和仪器 | 第45页 |
·实验方法 | 第45页 |
·统计学分析 | 第45页 |
·实验结果 | 第45-46页 |
讨论 | 第46-48页 |
附图 | 第48-49页 |
结论 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-54页 |
综述 | 第54-62页 |
个人简历 | 第62-63页 |
致谢 | 第63页 |