摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6页 |
论文中所用英文缩略语表单 | 第10-11页 |
第一章 绪论 | 第11-27页 |
1.1 引言 | 第11页 |
1.2 生物活性玻璃 | 第11-17页 |
1.2.1 熔融法 | 第12页 |
1.2.2 溶胶-凝胶法 | 第12-13页 |
1.2.3 有机模板结合溶胶-凝胶法 | 第13-15页 |
1.2.4 熔融纺丝法 | 第15-16页 |
1.2.5 静电纺丝结合溶胶-凝胶法 | 第16-17页 |
1.3 生物活性玻璃基支架 | 第17-19页 |
1.3.1 单组份支架 | 第17-19页 |
1.3.2 复合支架 | 第19页 |
1.4 基因转染载体 | 第19-24页 |
1.4.1 基因转染的屏障 | 第20-21页 |
1.4.2 脂质体 | 第21-22页 |
1.4.3 聚合物 | 第22-23页 |
1.4.5 无机纳米颗粒 | 第23-24页 |
1.5 基因激活基质 | 第24-25页 |
1.6 研究路线与意义 | 第25-27页 |
1.6.1 研究路线 | 第25-26页 |
1.6.2 研究意义 | 第26-27页 |
第二章 生物活性玻璃纤维的制备与表征 | 第27-43页 |
2.1 引言 | 第27页 |
2.2 实验材料和方法 | 第27-30页 |
2.2.1 实验试剂与设备 | 第27页 |
2.2.2 生物活性玻璃纤维制备方法 | 第27-29页 |
2.2.3 生物活性玻璃纤维的表征手段 | 第29-30页 |
2.3 不同因素对制备生物活性玻璃纤维的影响 | 第30-36页 |
2.3.1 不同水/正硅酸乙酯的摩尔比的影响 | 第31-32页 |
2.3.2 不同醇水体积比的影响 | 第32-33页 |
2.3.3 不同溶胶陈化时间的影响 | 第33-34页 |
2.3.4 不同含量 P123 的影响 | 第34-35页 |
2.3.5 不同粘结剂添加量 | 第35-36页 |
2.4 生物活性玻璃的体外矿化 | 第36-42页 |
2.4.1 生物活性玻璃纤维矿化后的形貌特征 | 第36-38页 |
2.4.2 生物活性玻璃纤维矿化后的结晶特性 | 第38-40页 |
2.4.3 生物活性玻璃纤维在矿化液中的离子释放特性 | 第40-42页 |
2.5 本章小结 | 第42-43页 |
第三章 重组质粒的构建和扩增 | 第43-52页 |
3.1 引言 | 第43页 |
3.2 实验材料和方法 | 第43-47页 |
3.2.1 实验试剂与设备 | 第43-44页 |
3.2.2 基本溶液配制 | 第44-45页 |
3.2.3 骨活素基因的 PCR 扩增 | 第45-46页 |
3.2.4 基因的双酶切及回收 | 第46-47页 |
3.2.5 重组质粒表达载体的构建 | 第47页 |
3.3 重组质粒的扩增、鉴定及表征 | 第47-51页 |
3.3.1 重组质粒的转化 | 第47-48页 |
3.3.2 重组质粒的提取 | 第48-49页 |
3.3.3 重组质粒的鉴定和表征 | 第49-51页 |
3.4 本章小结 | 第51-52页 |
第四章 生物活性玻璃纤维对基因转染的介导 | 第52-69页 |
4.1 引言 | 第52-53页 |
4.2 实验材料和方法 | 第53-55页 |
4.2.1 实验试剂与设备 | 第53页 |
4.2.2 实验操作 | 第53-55页 |
4.3 生物活性玻璃纤维与质粒的作用 | 第55页 |
4.4 不同因素对基因转染的影响 | 第55-61页 |
4.4.1 不同含量生物活性玻璃纤维的转染 | 第55-58页 |
4.4.2 不同质粒含量的转染 | 第58-59页 |
4.4.3 不同孵育时间 | 第59-60页 |
4.4.4 不同血清的引入方式的转染 | 第60-61页 |
4.5 生物活性玻璃纤维转染机理的探讨 | 第61-66页 |
4.5.1 不同组成纤维的基因转染 | 第61-62页 |
4.5.2 不同结构生物活性玻璃的基因转染 | 第62-66页 |
4.6 生物活性玻璃纤维与脂质体-质粒的共同转染 | 第66-68页 |
4.6.1 共同转染的转染效果 | 第66-67页 |
4.6.2 共同转染的碱性磷酸酶表达 | 第67-68页 |
4.7 本章小结 | 第68-69页 |
结论 | 第69-70页 |
参考文献 | 第70-78页 |
攻读博士/硕士学位期间取得的研究成果 | 第78-79页 |
致谢 | 第79-80页 |
附件 | 第80页 |