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CNTF基因修饰的骨髓间充质干细胞对视神经钳夹伤大鼠RGCs的保护作用

中文摘要第4-6页
Abstract第6-7页
缩略语/符号说明第11-12页
前言第12-15页
    研究现状、成果第12-14页
    研究目的、方法第14-15页
一、CNTF基因修饰的大鼠BMSCs的构建第15-29页
    1.1 对象和方法第15-17页
        1.1.1 细胞、菌种与质粒第15页
        1.1.2 主要试剂第15-16页
        1.1.3 主要仪器、耗材第16页
        1.1.4 主要溶液及缓冲液第16-17页
    1.2 实验方法及流程第17-23页
        1.2.1 大鼠BMSCs培养第17-18页
        1.2.2 慢病毒穿梭质粒CNTF-dTomato的构建第18-19页
        1.2.3 慢病毒的包装第19-20页
        1.2.4 病毒原液的收获和浓缩第20页
        1.2.5 重组慢病毒感染BMSCs第20-21页
        1.2.6 CNTF蛋白表达检测第21-22页
        1.2.7 CNTF-BMSCs诱导分化第22页
        1.2.8 CNTF-BMSCs分化潜能的鉴定第22页
        1.2.9 统计学分析方法第22-23页
    1.3 实验结果第23-27页
        1.3.1 慢病毒穿梭质粒CNTF-dTomato测序结果第23-24页
        1.3.2 重组慢病毒感染BMSCs的荧光鉴定第24页
        1.3.3 各组BMSCs不同时间细胞上清液中目的蛋白CNTF质量浓度第24-26页
        1.3.4 CNTF-BMSCs分化为成骨细胞和脂肪细胞的鉴定第26-27页
    1.4 讨论第27-28页
        1.4.1 中枢神经系统疾病干细胞及神经营养因子治疗第27页
        1.4.2 分泌型CNTF的表达第27-28页
    1.5 小结第28-29页
二、CNTF基因修饰的BMSCs对大鼠RGCs的保护作用第29-47页
    2.1 对象和方法第29-33页
        2.1.1 实验动物及分组第29页
        2.1.2 主要试剂第29-30页
        2.1.3 主要仪器、耗材第30-31页
        2.1.4 主要溶液及缓冲液第31-33页
    2.2 实验方法第33-39页
        2.2.1 ONC动物模型建立及玻璃体腔内给药第33-34页
        2.2.2 注射细胞在眼内定位情况的观察第34页
        2.2.3 视网膜组织病理学观察第34-35页
        2.2.4 视网膜内CNTF表达检测第35-36页
        2.2.5 视网膜组织蛋白提取第36页
        2.2.6 BCA法测定蛋白浓度第36-37页
        2.2.7 视网膜内Caspase-3、Brn-3a蛋白表达水平检测第37-39页
    2.3 实验结果第39-44页
        2.3.1 注射细胞眼内定位第39页
        2.3.2 视网膜节细胞层细胞数变化第39-40页
        2.3.3 视网膜形态学改变第40-41页
        2.3.4 CNTF蛋白在视网膜的定位及表达第41-43页
        2.3.5 视网膜Caspase-3、Brn3a蛋白表达第43-44页
    2.4 讨论第44-46页
        2.4.1 RGCs损伤模型第44-45页
        2.4.2 CNTF-BMSCs对RGCs的保护作用第45-46页
        2.4.3 CNTF-BMSCs抑制Caspase-3活化第46页
    2.5 小结第46-47页
结论第47-48页
参考文献第48-53页
发表论文和参加科研情况说明第53-54页
综述 CNTF治疗视网膜损伤研究进展第54-64页
    综述参考文献第60-64页
致谢第64页

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