| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英汉缩略词名词对照表 | 第10-11页 |
| 第一章 前言 | 第11-14页 |
| 技术路线 | 第13-14页 |
| 第二章 材料与方法 | 第14-23页 |
| 2.1 材料 | 第14-18页 |
| 2.1.1 细胞株、shRNA、裸鼠 | 第14页 |
| 2.1.2 主要实验试剂及耗材 | 第14-15页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第15页 |
| 2.1.4 试剂配置 | 第15-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-23页 |
| 2.2.1 人胃癌SGC7901细胞的复苏、培养和冻存 | 第18页 |
| 2.2.2 嘌呤霉素筛选浓度确定 | 第18-19页 |
| 2.2.3 质粒转染 | 第19页 |
| 2.2.4 嘌呤霉素抗性筛选 | 第19页 |
| 2.2.5 抗性克隆扩大培养 | 第19页 |
| 2.2.6 Western Blotting验证干扰效果 | 第19-21页 |
| 2.2.7 MTT细胞增殖试验 | 第21-22页 |
| 2.2.8 流式细胞仪测定细胞周期 | 第22页 |
| 2.2.9 裸鼠成瘤实验 | 第22页 |
| 2.2.10 统计学分析 | 第22-23页 |
| 第三章 实验结果 | 第23-29页 |
| 3.1 稳定转染细胞株的建立 | 第23页 |
| 3.2 Western Blotting验证14-3-3ε的表达 | 第23-24页 |
| 3.3 14-3-3ε表达水平对胃癌细胞SGC7901增殖能力的影响 | 第24-25页 |
| 3.4 14-3-3ε表达水平对胃癌细胞SGC7901周期的影响 | 第25-26页 |
| 3.5 14-3-3ε表达水平对胃癌细胞SGC7901裸鼠皮下成瘤能力的影响 | 第26-27页 |
| 3.6 14-3-3ε表达水平对细胞周期相关蛋白cyclin E和p27~(kipl)的影响 | 第27-29页 |
| 第四章 讨论 | 第29-31页 |
| 第五章 结论 | 第31-32页 |
| 参考文献 | 第32-37页 |
| 综述 14-3-3 蛋白及其相关的信号转导通路 | 第37-47页 |
| 参考文献 | 第41-47页 |
| 致谢 | 第47页 |
