| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-18页 |
| 1.1 纳米材料生物效应 | 第12-14页 |
| 1.1.1 碳纳米材料 | 第12-13页 |
| 1.1.2 金属纳米单质 | 第13-14页 |
| 1.1.3 稀土纳米氧化物 | 第14页 |
| 1.2 纳米材料对骨细胞的生物效应 | 第14-16页 |
| 1.2.1 羟基磷灰石 | 第15页 |
| 1.2.2 金纳米粒子 | 第15-16页 |
| 1.2.3 碳纳米管 | 第16页 |
| 1.3 立题依据 | 第16-18页 |
| 第二章 纳米 CeO_2、La_2O_3和 Y_2O_3的表征 | 第18-24页 |
| 2.1 实验试剂 | 第18页 |
| 2.2 实验仪器 | 第18页 |
| 2.3 实验方法 | 第18-19页 |
| 2.3.1 X 射线衍射 | 第18页 |
| 2.3.2 扫描电子显微镜 | 第18-19页 |
| 2.3.3 比表面积法 | 第19页 |
| 2.3.4 动态光散射法 | 第19页 |
| 2.4 实验结果 | 第19-23页 |
| 2.4.1 XRD 结果 | 第19-20页 |
| 2.4.2 尺寸及表面形貌 | 第20-21页 |
| 2.4.3 比表面积 | 第21页 |
| 2.4.4 水中的粒径分布 | 第21-23页 |
| 2.5 结果讨论 | 第23-24页 |
| 第三章 纳米 CeO_2对原代培养的成骨细胞增殖、分化及矿化功能的影响 | 第24-34页 |
| 3.1 实验材料 | 第24-25页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第24页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第24页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第24-25页 |
| 3.2 纳米 CeO_2的表征 | 第25页 |
| 3.3 实验部分 | 第25-27页 |
| 3.3.1 纳米 CeO_2溶液的配制 | 第25页 |
| 3.3.2 原代成骨细胞的分离培养 | 第25页 |
| 3.3.3 细胞活性检测 | 第25-26页 |
| 3.3.4 细胞对纳米 CeO_2的摄取 | 第26页 |
| 3.3.5 细胞周期分布检测 | 第26页 |
| 3.3.6 碱性磷酸酶活性检测 | 第26页 |
| 3.3.7 成脂分化检测 | 第26-27页 |
| 3.3.8 矿化功能检测 | 第27页 |
| 3.3.9 统计分析 | 第27页 |
| 3.4 实验结果 | 第27-32页 |
| 3.4.1 对细胞增殖的影响 | 第27-28页 |
| 3.4.2 细胞对纳米 CeO_2的摄取 | 第28-29页 |
| 3.4.3 对细胞周期的影响 | 第29-30页 |
| 3.4.4 对成骨细胞分化的影响 | 第30页 |
| 3.4.5 对细胞成脂分化的影响 | 第30-31页 |
| 3.4.6 对细胞矿化功能的影响 | 第31-32页 |
| 3.5 结果讨论 | 第32-34页 |
| 第四章 纳米 La_2O_3和 Y_2O_3对原代培养的成骨细胞增殖、分化及矿化功能的影响 | 第34-41页 |
| 4.1 实验材料 | 第34页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第34页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第34页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第34页 |
| 4.1.4 实验样品 | 第34页 |
| 4.2 纳米材料的表征 | 第34页 |
| 4.3 实验方法 | 第34-36页 |
| 4.3.1 原代成骨细胞的分离培养 | 第34页 |
| 4.3.2 细胞活性测定 | 第34-35页 |
| 4.3.3 碱性磷酸酶活性检测 | 第35页 |
| 4.3.4 细胞矿化功能测定 | 第35页 |
| 4.3.5 成脂横向分化测定 | 第35页 |
| 4.3.6 细胞对纳米颗粒的摄取 | 第35-36页 |
| 4.3.7 统计分析 | 第36页 |
| 4.4 实验结果 | 第36-40页 |
| 4.4.1 对细胞增殖的影响 | 第36页 |
| 4.4.2 对细胞分化的影响 | 第36-37页 |
| 4.4.3 对细胞矿化功能的影响 | 第37-38页 |
| 4.4.4 对细胞成脂分化的影响 | 第38-39页 |
| 4.4.5 细胞对纳米颗粒的摄取 | 第39-40页 |
| 4.5 结果讨论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 攻读学位期间取得的科研成果 | 第48页 |
