摘要 | 第12-13页 |
Abstract | 第13页 |
第一章 文献综述 | 第14-22页 |
1.1 百合离体快繁技术研究 | 第14-15页 |
1.1.1 外植体选择对百合组织培养的影响 | 第14页 |
1.1.2 培养基与激素对百合组织培养的影响 | 第14-15页 |
1.1.3 培养条件对百合组织培养的影响 | 第15页 |
1.1.4 其他方面对百合组织培养的影响 | 第15页 |
1.2 植物与病原菌互作中生理生化特性的影响 | 第15-18页 |
1.2.1 植物渗透调节物质与植物抗病的关系 | 第16页 |
1.2.2 植物保护酶系统与植物抗病的关系 | 第16-17页 |
1.2.3 病害胁迫对植物细胞膜系统的影响 | 第17-18页 |
1.3 百合灰霉病研究进展 | 第18-19页 |
1.4 MAPK在植物抗病中的防卫作用 | 第19-21页 |
1.4.1 MAPK信号级联系统 | 第19-20页 |
1.4.2 植物体MAPK的分类 | 第20页 |
1.4.3 植物中MAPKs功能 | 第20-21页 |
1.5 本课题研究的目的及意义 | 第21-22页 |
第二章 亚洲百合“精粹”离体再生快繁体系的建立 | 第22-31页 |
2.1 试验材料 | 第22-23页 |
2.1.1 试验材料 | 第22页 |
2.1.2 试验仪器及用具 | 第22页 |
2.1.3 试验药品准备 | 第22页 |
2.1.4 培养基 | 第22-23页 |
2.2 试验方法 | 第23-25页 |
2.2.1 设计方案 | 第23页 |
2.2.2 灭菌 | 第23页 |
2.2.3 外植体灭菌时间对建立无菌系的影响 | 第23-24页 |
2.2.4 不同接种部位对再生小鳞茎的影响 | 第24页 |
2.2.5 鳞茎放置方向对再生小鳞茎繁殖的影响 | 第24页 |
2.2.6 最适分化培养基的筛选 | 第24页 |
2.2.7 最适继代培养基的筛选 | 第24页 |
2.2.8 最适生根培养基的筛选 | 第24-25页 |
2.2.9 移栽 | 第25页 |
2.3 结果与分析 | 第25-30页 |
2.3.1 外植体灭菌时间对建立无菌系的影响 | 第25-26页 |
2.3.2 不同接种部位对再生小鳞茎的影响结果 | 第26页 |
2.3.3 鳞茎放置方向对再生小鳞茎繁殖的影响结果 | 第26页 |
2.3.4 最适分化培养基的筛选结果 | 第26-27页 |
2.3.5 最适继代培养基的筛选结果 | 第27-28页 |
2.3.6 最适生根培养基的筛选结果 | 第28-29页 |
2.3.7 移栽试验结果 | 第29-30页 |
2.4 讨论 | 第30-31页 |
第三章 椭圆灰葡萄孢胁迫下亚洲百合的生理响应 | 第31-44页 |
3.1 试验材料 | 第31-32页 |
3.1.1 供试材料 | 第31页 |
3.1.2 试验仪器及用具 | 第31页 |
3.1.3 试验药品准备 | 第31-32页 |
3.1.4 PDA培养基 | 第32页 |
3.2 试验方法 | 第32-37页 |
3.2.1 椭圆灰葡萄孢(灰霉病菌)培养 | 第32页 |
3.2.2 椭圆灰葡萄孢侵染供试材料 | 第32-33页 |
3.2.3 丙二醛(MDA)含量测定 | 第33页 |
3.2.4 过氧化物歧化酶(SOD)含量测定 | 第33-34页 |
3.2.5 过氧化物酶(POD)含量测定 | 第34页 |
3.2.6 多酚氧化酶(PPO)含量测定 | 第34-35页 |
3.2.7 苯丙氨酸解氨酶(PAL)含量测定 | 第35-36页 |
3.2.8 可溶性蛋白含量测定 | 第36-37页 |
3.2.9 可溶性糖含量测定 | 第37页 |
3.3 试验结果 | 第37-41页 |
3.3.1 丙二醛(MDA)含量变化 | 第37-38页 |
3.3.2 过氧化物歧化酶(SOD)活性变化 | 第38页 |
3.3.3 过氧化物酶(POD)活性 | 第38-39页 |
3.3.4 多酚氧化酶(PPO)含量 | 第39页 |
3.3.5 苯丙氨酸解氨酶(PAL)活性变化 | 第39-40页 |
3.3.6 可溶性蛋白含量 | 第40页 |
3.3.7 可溶性糖含量 | 第40-41页 |
3.4 讨论 | 第41-44页 |
3.4.1 灰霉病对亚洲百合“精粹”试管苗质膜系统的影响 | 第41页 |
3.4.2 灰霉病对亚洲百合“精粹”试管苗渗透调节系统的影响 | 第41-42页 |
3.4.3 灰霉病对亚洲百合“精粹”试管苗酶保护系统的影响 | 第42-44页 |
第四章 亚洲百合抗灰霉MAPK基因克隆及序列分析 | 第44-62页 |
4.1 材料和方法 | 第44-45页 |
4.1.1 供试材料 | 第44页 |
4.1.2 试验仪器 | 第44页 |
4.1.3 试验药品 | 第44-45页 |
4.1.4 生物学软件 | 第45页 |
4.2 试验准备 | 第45-46页 |
4.2.1 前期准备及常用溶液配制 | 第45页 |
4.2.2 试验中引物设计 | 第45-46页 |
4.3 试验方法 | 第46-53页 |
4.3.1 总RNA提取 | 第46-47页 |
4.3.2 反转录合成第一链cDNA | 第47页 |
4.3.3 MAPK基因保守区扩增 | 第47-50页 |
4.3.4 MAPK基因3’端序列扩增及测序 | 第50-51页 |
4.3.5 MAPK基因5’端序列扩增及测序 | 第51-52页 |
4.3.6 MAPK基因全长的扩增及测序 | 第52-53页 |
4.4 结果与分析 | 第53-61页 |
4.4.1 总RNA提取 | 第53页 |
4.4.2 MAPK中间保守区克隆 | 第53-54页 |
4.4.3 MAPK3’RACE克隆 | 第54页 |
4.4.4 MAPK5'RACE克隆 | 第54-55页 |
4.4.5 MAPK全长克隆 | 第55-56页 |
4.4.6 MAPK生物信息学分析 | 第56-58页 |
4.4.7 MAPK蛋白质结构预测 | 第58-61页 |
4.5 讨论 | 第61-62页 |
第五章 全文总结 | 第62-64页 |
5.1 亚洲百合“精粹”离体再生快繁体系的建立 | 第62页 |
5.2 椭圆灰葡萄孢胁迫下亚洲百合的生理响应 | 第62-63页 |
5.3 亚洲百合MAPK基因克隆 | 第63页 |
5.4 本试验后续研究 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-70页 |
附录 | 第70-71页 |
缩略词 | 第71-72页 |
致谢 | 第72页 |