纤维素酶水解植物纤维局部化学变化的初步研究
摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
1 绪论 | 第12-24页 |
1.1 研究背景 | 第12页 |
1.2 植物纤维原料细胞壁概述 | 第12-15页 |
1.2.1 植物纤维原料细胞壁结构 | 第12-14页 |
1.2.2 植物纤维原料细胞壁的组成 | 第14-15页 |
1.3 纤维素酶 | 第15-19页 |
1.3.1 纤维素酶简介及组成 | 第16页 |
1.3.2 纤维素的酶水解机理 | 第16-17页 |
1.3.3 酶水解对纤维形态和结构影响的研究进展 | 第17-19页 |
1.4 CMF概况 | 第19-20页 |
1.5 高效液相色谱简介 | 第20-22页 |
1.6 课题的研究意义及研究内容 | 第22-24页 |
1.6.1 课题的研究目的和意义 | 第22-23页 |
1.6.2 课题研究的主要内容 | 第23-24页 |
2 漂白针叶木纤维细胞壁内外层分离方法的研究 | 第24-33页 |
2.1 引言 | 第24页 |
2.2 实验部分 | 第24-26页 |
2.2.1 原料、药品 | 第24页 |
2.2.2 实验设备及仪器 | 第24页 |
2.2.3 实验方法 | 第24-25页 |
2.2.4 检测方法 | 第25-26页 |
2.3 结果与讨论 | 第26-32页 |
2.3.1 确定超声处理适宜时间 | 第26-28页 |
2.3.2 动态滤水仪筛分后纤维形貌观察 | 第28页 |
2.3.3 超声处理对纤维形态参数的影响 | 第28-29页 |
2.3.4 超声处理对纤维素聚合度的影响 | 第29页 |
2.3.5 超声处理对纤维素分子结构的影响 | 第29-30页 |
2.3.6 DDJ筛分后纤维质量的估算 | 第30-32页 |
2.4 本章小结 | 第32-33页 |
3 高效液相色谱(HPLC)单糖分析方法的建立 | 第33-40页 |
3.1 引言 | 第33页 |
3.2 实验部分 | 第33-35页 |
3.2.1 色谱柱的选择 | 第33-34页 |
3.2.2 实验试剂 | 第34页 |
3.2.3 实验设备及仪器 | 第34页 |
3.2.4 实验方法 | 第34-35页 |
3.3 结果与讨论 | 第35-39页 |
3.3.1 五种标准糖色谱图 | 第35页 |
3.3.2 五种标准糖标准曲线绘制 | 第35-38页 |
3.3.3 重现性 | 第38-39页 |
3.4 本章小结 | 第39-40页 |
4 纤维素酶的酶活测定 | 第40-46页 |
4.1 引言 | 第40页 |
4.2 实验部分 | 第40-42页 |
4.2.1 原料、药品 | 第40页 |
4.2.2 实验设备及仪器 | 第40页 |
4.2.3 实验方法 | 第40-42页 |
4.3 结果与讨论 | 第42-45页 |
4.3.1 葡萄糖标准曲线的绘制 | 第42页 |
4.3.2 复合纤维素酶滤纸酶活测定 | 第42-43页 |
4.3.3 内切纤维素酶CMC酶活测定 | 第43-44页 |
4.3.4 外切纤维素酶MCC酶活测定 | 第44-45页 |
4.4 本章小结 | 第45-46页 |
5 纤维素酶水解对纤维形态的影响 | 第46-63页 |
5.1 引言 | 第46页 |
5.2 实验部分 | 第46-48页 |
5.2.1 实验原料、药品 | 第46页 |
5.2.2 实验设备及仪器 | 第46页 |
5.2.3 实验方法 | 第46-47页 |
5.2.4 检测方法 | 第47-48页 |
5.3 结果与讨论 | 第48-62页 |
5.3.1 纤维形貌观察 | 第48-55页 |
5.3.2 纤维形态分析 | 第55-62页 |
5.4 本章小结 | 第62-63页 |
6 纤维素酶水解对纤维细胞壁局部化学变化的影响 | 第63-78页 |
6.1 引言 | 第63页 |
6.2 实验部分 | 第63-65页 |
6.2.1 实验原料、药品 | 第63页 |
6.2.2 实验设备及仪器 | 第63-64页 |
6.2.3 实验方法 | 第64页 |
6.2.4 分析检测 | 第64-65页 |
6.3 结果与讨论 | 第65-76页 |
6.3.1 高效液相色谱分析 | 第65-71页 |
6.3.2 聚合度分析 | 第71-76页 |
6.4 本章小结 | 第76-78页 |
7 结论与建议 | 第78-80页 |
7.1 结论 | 第78-79页 |
7.2 创新之处 | 第79页 |
7.3 存在问题与建议 | 第79-80页 |
致谢 | 第80-81页 |
参考文献 | 第81-88页 |
攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第88-89页 |