| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7页 |
| 英文缩略表 | 第15-16页 |
| 第一章 引言 | 第16-24页 |
| 1.1 蜂胶成分及作用 | 第16-17页 |
| 1.1.1 蜂胶的化学组成 | 第16-17页 |
| 1.2 蜂胶的生物学意义 | 第17页 |
| 1.2.1 蜂胶是蜂巢里的环保“涂料” | 第17页 |
| 1.2.2 蜂胶是蜜蜂蜂巢里的理想建筑材料 | 第17页 |
| 1.2.3 蜂胶是蜂群的天然防腐和抗氧化剂 | 第17页 |
| 1.2.4 蜂胶可作为蜜蜂的消毒剂 | 第17页 |
| 1.3 蜂胶的成分 | 第17-18页 |
| 1.3.1 主要营养素 | 第18页 |
| 1.3.2 酚酸类物质 | 第18页 |
| 1.3.3 黄酮类物质 | 第18页 |
| 1.3.4 萜烯类化合物 | 第18页 |
| 1.4 蜂胶的功能性质 | 第18-19页 |
| 1.4.1 抗氧化性 | 第18-19页 |
| 1.4.2 抗肿瘤作用 | 第19页 |
| 1.4.3 免疫调节作用 | 第19页 |
| 1.4.4 抗病毒和抗菌 | 第19页 |
| 1.5 脑缺血再灌注损伤 | 第19-20页 |
| 1.6 蜂胶抗脑缺血再灌注损伤 | 第20-23页 |
| 1.6.1 自由基 | 第20页 |
| 1.6.2 免疫炎症 | 第20-21页 |
| 1.6.3 NO | 第21-22页 |
| 1.6.4 Ca2+超载 | 第22页 |
| 1.6.5 兴奋性氨基酸 | 第22页 |
| 1.6.6 细胞凋亡 | 第22-23页 |
| 1.7 选题目的与研究意义 | 第23页 |
| 1.8 主要研究内容 | 第23-24页 |
| 第二章 蜂胶组分的活性筛选及其单体化合物的分离纯化 | 第24-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第24页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第24页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-27页 |
| 2.2.1 样品制备 | 第24-25页 |
| 2.2.2 黄酮/醇含量测定 | 第25页 |
| 2.2.3 总酚含量测定 | 第25页 |
| 2.2.4 二氢黄酮/醇含量测定 | 第25页 |
| 2.2.5 N2a细胞培养技术 | 第25-26页 |
| 2.2.6 OGD/R模型及蜂胶分离组分的干预 | 第26页 |
| 2.2.7 CCK-8 法检测细胞存活率 | 第26页 |
| 2.2.8 吉姆萨染色 | 第26-27页 |
| 2.2.9 TLC分析 | 第27页 |
| 2.2.10 HPLC制备 | 第27页 |
| 2.2.11 液相-串联质谱鉴定单体化合物的结构 | 第27页 |
| 2.2.12 统计学处理 | 第27页 |
| 2.3 结果与分析 | 第27-35页 |
| 2.3.1 各组分的分离流程 | 第27-28页 |
| 2.3.2 黄酮/醇、总酚、二氢黄酮/醇含量的测定 | 第28-29页 |
| 2.3.3 薄层层析色谱 | 第29页 |
| 2.3.4 对Fr.1、Fr.2、Fr.3 和Fr.4 进行活性筛选 | 第29-30页 |
| 2.3.5 对各处理组细胞进行吉姆萨染色，观察细胞形态 | 第30-32页 |
| 2.3.6 分离鉴定单体化合物 | 第32-35页 |
| 2.4 小结 | 第35-37页 |
| 第三章 蜂胶单体化合物抗OGD/R致损N2a细胞作用的研究 | 第37-40页 |
| 3.1 实验材料 | 第37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-38页 |
| 3.2.1 样品制备 | 第37页 |
| 3.2.2 咖啡酸肉桂酯、咖啡酸苯乙酯、咖啡酸苄酯的细胞学筛选 | 第37页 |
| 3.2.3 检测细胞存活率 | 第37页 |
| 3.2.4 吉姆萨染色法对细胞进行形态学观察 | 第37页 |
| 3.2.5 统计学处理 | 第37-38页 |
| 3.3 结果与分析 | 第38-39页 |
| 3.3.1 蜂胶单体化合物活性筛选 | 第38页 |
| 3.3.2 吉姆萨染色法观察N2a细胞形态 | 第38-39页 |
| 3.4 小结 | 第39-40页 |
| 第四章 咖啡酸肉桂酯抗OGD/R致损N2a细胞的机理研究 | 第40-47页 |
| 4.1 实验材料 | 第40页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第40页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第40页 |
| 4.2 实验方法 | 第40-42页 |
| 4.2.1 N2a细胞中CAT活性检测 | 第40-41页 |
| 4.2.2 N2a细胞中SOD1含量检测 | 第41页 |
| 4.2.3 N2a细胞中GPX1含量检测 | 第41页 |
| 4.2.4 细胞内NO含量检测 | 第41页 |
| 4.2.5 细胞内NOS活性检测 | 第41-42页 |
| 4.2.6 统计学处理 | 第42页 |
| 4.3 结果与分析 | 第42-46页 |
| 4.3.1 咖啡酸肉桂酯对OGD/R致损N2a细胞CAT活力的干预作用 | 第42-43页 |
| 4.3.2 咖啡酸肉桂酯对OGD/R致损N2a细胞SOD1活力的干预作用 | 第43页 |
| 4.3.3 咖啡酸肉桂酯对OGD/R致损N2a细胞GPX1活力的干预作用 | 第43-44页 |
| 4.3.4 咖啡酸肉桂酯对OGD/R致损N2a细胞NO含量的干预作用 | 第44-45页 |
| 4.3.5 咖啡酸肉桂酯对OGD/R致损N2a细胞NOS含量的干预作用 | 第45-46页 |
| 4.4 结论 | 第46-47页 |
| 第五章 东北蜂胶体外抗OGD/R致损N2a细胞作用及成分研究 | 第47-55页 |
| 5.1 实验材料 | 第47页 |
| 5.1.1 材料和试剂 | 第47页 |
| 5.1.2 仪器与设备 | 第47页 |
| 5.2 实验方法 | 第47-48页 |
| 5.2.1 样品制备 | 第47-48页 |
| 5.2.2 山东蜂胶和吉林蜂胶的HPLC分析方法 | 第48页 |
| 5.2.3 六种蜂胶样品体外抗OGD/R致损N2a细胞作用实验 | 第48页 |
| 5.2.4 检测细胞存活率 | 第48页 |
| 5.2.5 吉姆萨染色法对细胞进行形态学观察 | 第48页 |
| 5.2.6 松属素和P-香豆酸苄酯标准曲线的建立 | 第48页 |
| 5.2.7 统计学处理 | 第48页 |
| 5.3 结果与分析 | 第48-54页 |
| 5.3.1 山东蜂胶和吉林蜂胶的成分差异性分析 | 第48-50页 |
| 5.3.2 东北蜂胶体外抗脑缺血再灌注损伤作用 | 第50-51页 |
| 5.3.3 吉姆萨染色法观察N2a细胞形态 | 第51-52页 |
| 5.3.4 东北蜂胶样品中松属素和P-香豆酸苄酯的含量测定 | 第52-53页 |
| 5.3.5 P-香豆酸苄酯的体外抗脑缺血再灌损伤的作用 | 第53-54页 |
| 5.4 小结 | 第54-55页 |
| 第六章 全文结论 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 作者简历 | 第63页 |
