摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第一章 绪论 | 第11-27页 |
1.1 银杏多糖的概况 | 第11-14页 |
1.1.1 银杏的简介 | 第11页 |
1.1.2 银杏外种皮多糖 | 第11页 |
1.1.3 银杏叶多糖 | 第11-13页 |
1.1.4 银杏白果多糖 | 第13-14页 |
1.2 多糖的提取方法 | 第14-16页 |
1.2.1 溶剂浸提法 | 第14页 |
1.2.2 超临界流体萃取法 | 第14-15页 |
1.2.3 微波萃取法 | 第15页 |
1.2.4 酶辅助提取法 | 第15-16页 |
1.2.5 超声提取方法 | 第16页 |
1.3 多糖的分离纯化 | 第16-17页 |
1.4 多糖的结构 | 第17-19页 |
1.4.1 分子量及单糖组成分析 | 第17-18页 |
1.4.2 糖残基连接位置与顺序 | 第18页 |
1.4.3 多糖的高级结构 | 第18页 |
1.4.4 红外光谱 | 第18-19页 |
1.4.5 紫外光谱 | 第19页 |
1.4.6 色谱质谱 | 第19页 |
1.5 多糖的构效关系 | 第19-21页 |
1.5.1 多糖一级结构与活性的构效关系 | 第20页 |
1.5.2 多糖高级结构与活性的构效关系 | 第20-21页 |
1.6 食品工业中的抑菌应用 | 第21-25页 |
1.6.1 细菌的抑制作用 | 第21-22页 |
1.6.2 霉菌的抑制作用 | 第22-23页 |
1.6.3 可食性保鲜膜 | 第23-25页 |
1.7 本课题的研究意义及主要内容 | 第25-27页 |
1.7.1 研究的目的 | 第25-26页 |
1.7.2 研究的主要内容 | 第26-27页 |
第二章 材料与方法 | 第27-39页 |
2.1 实验材料 | 第27页 |
2.2 主要试剂与药品 | 第27-28页 |
2.3 主要仪器 | 第28-29页 |
2.4 实验方法 | 第29-39页 |
2.4.1 原料的预处理 | 第29页 |
2.4.2 银杏叶多糖的制备 | 第29页 |
2.4.3 银杏叶多糖提取条件的优化 | 第29-32页 |
2.4.4 银杏叶多糖的定性分析 | 第32-33页 |
2.4.5 银杏叶多糖的分离纯化 | 第33-34页 |
2.4.6 银杏叶多糖的结构研究 | 第34-35页 |
2.4.7 银杏叶多糖体外抑菌作用研究 | 第35-37页 |
2.4.8 银杏叶多糖保鲜膜的研制 | 第37-39页 |
第三章 结果与讨论 | 第39-65页 |
3.1 银杏叶多糖提取条件的优化 | 第39-48页 |
3.1.1 酶辅助水溶醇沉法对多糖得率的影响 | 第39-41页 |
3.1.2 超声波辅助水溶醇沉法对多糖得率的影响 | 第41-42页 |
3.1.3 最佳提取方法的选择 | 第42-43页 |
3.1.4 单因素实验 | 第43-45页 |
3.1.5 响应面实验 | 第45-48页 |
3.2 银杏叶多糖的定性分析 | 第48-49页 |
3.3 银杏叶中多糖的纯化 | 第49-51页 |
3.3.1 DEAE-52纤维素柱层析 | 第49-50页 |
3.3.2 GBLP的SEPHADEX G-100葡聚糖凝胶柱层析 | 第50-51页 |
3.4 银杏叶多糖的结构分析 | 第51-55页 |
3.4.1 紫外光谱分析 | 第51页 |
3.4.2 红外光谱分析 | 第51-52页 |
3.4.3 扫描电镜 | 第52-53页 |
3.4.4 高效液相色谱法测定单糖组成及摩尔比 | 第53-55页 |
3.5 银杏叶多糖抑菌性的研究 | 第55-59页 |
3.5.1 银杏叶多糖对细菌抑菌性的研究 | 第55-58页 |
3.5.2 霉菌的抑菌性研究 | 第58-59页 |
3.6 银杏叶多糖保鲜膜的研制 | 第59-65页 |
3.6.1 甘油用量对GBLP保鲜膜性能的影响 | 第59-60页 |
3.6.2 乙酸体积分数对GBLP保鲜膜性能的影响 | 第60-61页 |
3.6.3 蜂蜡添加量对GBLP保鲜膜性能的影响 | 第61-62页 |
3.6.4 GBLP添加量对GBLP保鲜膜性能的影响 | 第62-63页 |
3.6.5 正交实验 | 第63-64页 |
3.6.6 验证实验 | 第64-65页 |
第四章 结论 | 第65-67页 |
参考文献 | 第67-75页 |
致谢 | 第75-77页 |
附录 | 第77页 |