透明质酸两亲性聚合物的合成及在抗肿瘤药物传递中的应用研究
摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4页 |
第一章 绪论 | 第8-17页 |
1.1 阿霉素概述 | 第8-9页 |
1.2 药物传递系统 | 第9-12页 |
1.2.1 无机材料型药物传递系统 | 第9-10页 |
1.2.2 合成高分子材料型药物传递系统 | 第10-11页 |
1.2.3 天然高分子材料型药物传递系统 | 第11-12页 |
1.3 透明质酸给药系统 | 第12-14页 |
1.3.1 多糖与透明质酸 | 第13页 |
1.3.2 透明质酸的靶向性应用 | 第13-14页 |
1.4 脂质体 | 第14-16页 |
1.4.1 脂质体概述 | 第14页 |
1.4.2 脂质体的应用 | 第14-16页 |
1.5 本文研究内容及意义 | 第16-17页 |
第二章 透明质酸聚合物胶束的制备及表征 | 第17-25页 |
2.1 引言 | 第17页 |
2.2 材料与仪器 | 第17-18页 |
2.2.1 实验材料 | 第17页 |
2.2.2 实验仪器 | 第17-18页 |
2.3 实验方法 | 第18-20页 |
2.3.1 HOA两亲性聚合物的合成 | 第18页 |
2.3.2 阿霉素碱基的制备 | 第18页 |
2.3.3 聚合物胶束的制备 | 第18页 |
2.3.4 粒径及zeta电位测定 | 第18-19页 |
2.3.5 载药量和包封率的测定 | 第19页 |
2.3.6 体外药物释放 | 第19-20页 |
2.3.7 体外细胞毒性 | 第20页 |
2.4 结果与讨论 | 第20-24页 |
2.4.1 HOA聚合物的合成 | 第20页 |
2.4.2 粒径及zeta电位 | 第20-21页 |
2.4.3 载药量测定 | 第21-22页 |
2.4.4 体外药物释放 | 第22-24页 |
2.5 本章小结 | 第24-25页 |
第三章 阿霉素靶向脂质体的制备 | 第25-38页 |
3.1 引言 | 第25页 |
3.2 材料与仪器 | 第25-26页 |
3.2.1 实验材料 | 第25-26页 |
3.2.2 实验仪器 | 第26页 |
3.3 实验方法 | 第26-29页 |
3.3.1 脂质体处方及工艺筛选 | 第26-27页 |
3.3.2 阿霉素脂质体的制备 | 第27页 |
3.3.3 阿霉素靶向脂质体的制备 | 第27-28页 |
3.3.4 粒径和电位测定 | 第28页 |
3.3.5 脂质体形貌观察 | 第28页 |
3.3.6 包封率测定 | 第28-29页 |
3.3.7 体外释放 | 第29页 |
3.3.8 脂质体稳定性考察 | 第29页 |
3.4 结果与讨论 | 第29-37页 |
3.4.1 脂质体处方及工艺筛选 | 第29-32页 |
3.4.2 阿霉素脂质体的制备 | 第32页 |
3.4.3 阿霉素靶向脂质体的制备 | 第32-33页 |
3.4.4 粒径及zeta电位 | 第33-34页 |
3.4.5 TEM形态观察 | 第34页 |
3.4.6 包封率测定 | 第34-36页 |
3.4.7 体外释放实验 | 第36页 |
3.4.8 稳定性考察 | 第36-37页 |
3.5 本章小结 | 第37-38页 |
第四章 靶向脂质体的体外抗肿瘤评价 | 第38-46页 |
4.1 引言 | 第38页 |
4.2 材料与仪器 | 第38-39页 |
4.2.1 实验材料 | 第38页 |
4.2.2 实验仪器 | 第38-39页 |
4.2.3 实验细胞 | 第39页 |
4.3 实验方法 | 第39-41页 |
4.3.1 常用试剂配制 | 第39页 |
4.3.2 细胞培养 | 第39-40页 |
4.3.3 最佳密度筛选 | 第40页 |
4.3.4 细胞毒性 | 第40-41页 |
4.3.5 细胞摄取 | 第41页 |
4.4 结果与讨论 | 第41-45页 |
4.4.1 最佳密度筛选 | 第41-42页 |
4.4.2 细胞毒性考察 | 第42-43页 |
4.4.3 流式细胞仪考察 | 第43-44页 |
4.4.4 荧光显微镜定性观察 | 第44-45页 |
4.5 本章小结 | 第45-46页 |
主要结论与展望 | 第46-48页 |
主要结论 | 第46-47页 |
展望 | 第47-48页 |
致谢 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-53页 |
附录: 作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第53页 |