| 研究生导师及课题指导小组成员简介 | 第5-9页 |
| 摘要 | 第9-14页 |
| Abstract | 第14-19页 |
| 主要符号表 | 第20-21页 |
| 前言 | 第21-29页 |
| 第一部分 研究内容与方法 | 第29-41页 |
| 1.1 主要试剂与仪器 | 第29-31页 |
| 1.1.1 主要试剂 | 第29-30页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第30-31页 |
| 1.2 实验动物及致敏方法 | 第31-33页 |
| 1.2.1 实验动物及分组 | 第31-32页 |
| 1.2.2 致敏方法 | 第32-33页 |
| 1.3 实验方法 | 第33-40页 |
| 1.3.1 小鼠一般状况观察 | 第33-34页 |
| 1.3.2 组织样品的采集及处理 | 第34页 |
| 1.3.3 小鼠血清中IgE的检测方法 | 第34-35页 |
| 1.3.4 小鼠肺组织匀浆中细胞因子IL-4、IFN-γ、IL-13 的检测方法 | 第35页 |
| 1.3.5 小鼠支气管肺泡灌洗液（BALF）的收集及炎细胞分类计数方法 | 第35-36页 |
| 1.3.6 小鼠BALF中细胞因子IL-4、IFN-γ 的检测方法 | 第36-37页 |
| 1.3.7 小鼠BALF中炎细胞涂片的方法 | 第37页 |
| 1.3.8 小鼠气管、肺组织病理切片方法 | 第37-38页 |
| 1.3.9 小鼠肺组织中ROR-γt、IL-17A、Foxp3和TSLP基因mRNA的检测方法 | 第38页 |
| 1.3.10 小鼠肺组织Foxp3、ROR-γt、IL-17A和TSLP基因启动子区甲基化水平的检测方法 | 第38-39页 |
| 1.3.11 小鼠Western Blot检测肺组织中TSLP蛋白表达的方法 | 第39-40页 |
| 1.4 统计学分析 | 第40-41页 |
| 第二部分 结果 | 第41-51页 |
| 2.1 TDI小鼠哮喘模型建立的结果 | 第41-43页 |
| 2.1.1 TDI对两组小鼠一般情况和体重的影响 | 第41页 |
| 2.1.2 两组小鼠BALF中炎细胞计数与分类及涂片的变化 | 第41-42页 |
| 2.1.3 两组小鼠BALF中细胞因子IL-4、IFN-γ 表达水平的比较 | 第42-43页 |
| 2.1.4 两组小鼠肺组织HE病理变化 | 第43页 |
| 2.2 TSLP表达及Th17/Treg细胞平衡在TDI哮喘中的变化及其相关基因启动子区甲基化改变模式 | 第43-47页 |
| 2.2.1 TDI对两组小鼠一般情况的影响 | 第43页 |
| 2.2.2 两组小鼠BALF中炎细胞计数与分类的变化 | 第43-44页 |
| 2.2.3 两组小鼠气管、肺组织HE病理变化 | 第44-45页 |
| 2.2.4 两组小鼠肺组织中ROR-γt、IL-17A、Foxp3和TSLP基因mRNA表达水平的比较 | 第45页 |
| 2.2.5 两组小鼠肺组织ROR-γt、IL-17A、Foxp3和TSLP基因启动子区甲基化水平的比较 | 第45-47页 |
| 2.3 TSLP中和抗体对小鼠TDI哮喘的保护作用 | 第47-51页 |
| 2.3.1 三组小鼠的临床表现 | 第47页 |
| 2.3.2 三组小鼠血清中IgE和肺组织匀浆中IFN-γ、IL-4 和IL-13 的细胞因子水平测定结果 | 第47-48页 |
| 2.3.3 三组小鼠气管、肺组织HE病理变化 | 第48-49页 |
| 2.3.4 western blot检测三组小鼠肺脏TSLP的蛋白表达的结果 | 第49-50页 |
| 2.3.5 三组小鼠肺组织中IL-17A、ROR-γt和FoxP3基因mRNA表达水平的比较 | 第50-51页 |
| 第三部分 讨论 | 第51-57页 |
| 3.1 动物模型的建立 | 第51-52页 |
| 3.2 TSLP表达及Th17/Treg细胞平衡在TDI哮喘中的变化及其相关基因启动子区甲基化改变模式 | 第52-54页 |
| 3.3 TSLP中和抗体干预对小鼠TDI哮喘的保护作用 | 第54-57页 |
| 结论 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第63-65页 |
| 致谢 | 第65页 |
