| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-25页 |
| 1 硫酸化多糖的研究进展 | 第11-12页 |
| 1.1 天然硫酸化多糖的抗病毒作用 | 第11页 |
| 1.2 合成硫酸化多糖的抗病毒作用 | 第11-12页 |
| 1.3 硫酸化多糖的抗病毒机理 | 第12页 |
| 2 硫酸化多糖的制备 | 第12-15页 |
| 2.1 多糖的提取和纯化 | 第12-14页 |
| 2.2 多糖的硫酸化修饰方法 | 第14-15页 |
| 3 当归研究进展 | 第15-19页 |
| 3.1 当归的药用价值 | 第15-17页 |
| 3.2 当归的化学成分 | 第17-19页 |
| 4 本研究的目的和意义 | 第19页 |
| 参考文献 | 第19-25页 |
| 第二章 当归多糖的提取分离和纯化 | 第25-35页 |
| 1 材料与方法 | 第25-28页 |
| 1.1 主要试剂 | 第25页 |
| 1.2 主要仪器 | 第25-26页 |
| 1.3 当归多糖的提取 | 第26页 |
| 1.4 当归多糖的纯化 | 第26-27页 |
| 1.5 多糖含量测定 | 第27页 |
| 1.6 多糖的蛋白含量测定 | 第27页 |
| 1.7 相关指标计算方法 | 第27-28页 |
| 2 结果 | 第28-31页 |
| 2.1 优化的提取条件 | 第28-29页 |
| 2.2 当归多糖的纯化 | 第29-31页 |
| 3 讨论 | 第31-32页 |
| 3.1 当归多糖提取条件的优化 | 第31页 |
| 3.2 当归多糖的去蛋白 | 第31页 |
| 3.3 当归多糖的分离 | 第31-32页 |
| 3.4 多糖和蛋白含量的测定方法 | 第32页 |
| 参考文献 | 第32-35页 |
| 第三章 当归多糖的硫酸化修饰 | 第35-45页 |
| 1 材料与方法 | 第35-38页 |
| 1.1 药物 | 第35页 |
| 1.2 试剂 | 第35-36页 |
| 1.3 主要仪器 | 第36页 |
| 1.4 当归多糖硫酸化修饰响应面试验设计 | 第36页 |
| 1.5 当归多糖的硫酸化修饰 | 第36-37页 |
| 1.6 硫酸化当归多糖取代度的测定 | 第37页 |
| 1.7 回归模型的建立 | 第37页 |
| 1.8 回归模型的有效性分析 | 第37页 |
| 1.9 主效应分析 | 第37页 |
| 1.10 因素交互影响分析 | 第37-38页 |
| 1.11 回归模型的有效性验证 | 第38页 |
| 2 结果 | 第38-42页 |
| 2.1 响应面试验的响应值 | 第38-39页 |
| 2.2 回归模型 | 第39页 |
| 2.3 回归模型的有效性 | 第39页 |
| 2.4 回归模型的主效应 | 第39页 |
| 2.5 因素的交互影响 | 第39-42页 |
| 2.6 回归模型的有效性验证 | 第42页 |
| 3 讨论 | 第42-43页 |
| 3.1 反应温度和反应时间的交互作用 | 第42-43页 |
| 3.2 响应面法相比传统因素优化法的优势 | 第43页 |
| 参考文献 | 第43-45页 |
| 第四章 硫酸化当归多糖抗鸡新城疫病毒活性的比较 | 第45-55页 |
| 1 材料与方法 | 第45-47页 |
| 1.1 硫酸化当归多糖 | 第45页 |
| 1.2 病毒的准备 | 第45-46页 |
| 1.3 细胞的准备 | 第46页 |
| 1.4 主要试剂和仪器 | 第46页 |
| 1.5 sCAPS对CEF安全浓度的测定 | 第46页 |
| 1.6 sCAPS抵抗NDV感染CEF能力的测定 | 第46-47页 |
| 1.7 数据分析 | 第47页 |
| 2 结果 | 第47-52页 |
| 2.1 sCAPS对CEF的最大安全浓度 | 第47-49页 |
| 2.2 sCAPS抗NDV感染CEF的作用 | 第49-52页 |
| 3 讨论 | 第52-53页 |
| 3.1 sCAPS对CEF的安全浓度和抵抗NDV感染的影响 | 第52页 |
| 3.2 试验设计对试验结果的影响 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-55页 |
| 全文结论 | 第55-57页 |
| 论文创新点 | 第57-59页 |
| 攻读硕士学位期间发表和完成的学术论文 | 第59-61页 |
| 致谢 | 第61页 |