摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-9页 |
第一章 绪论 | 第14-27页 |
1.1 高血压与血管紧张素转化酶 | 第14-16页 |
1.2 食源性的降血压肽 | 第16-20页 |
1.2.1 从食物原料中制备降血压肽的优势 | 第17-18页 |
1.2.2 ACE抑制肽的分类 | 第18页 |
1.2.3 ACE抑制肽的检测方法 | 第18-19页 |
1.2.4 ACE抑制肽的制备方法 | 第19-20页 |
1.3 生物信息学与生物活性肽 | 第20-21页 |
1.4 酶膜反应器及其在食品工业上的应用 | 第21-24页 |
1.4.1 酶膜耦合技术的分类 | 第22页 |
1.4.2 酶膜反应器的特点 | 第22页 |
1.4.3 酶膜反应器在食品工业上的应用 | 第22-24页 |
1.5 本项目研究的目的、意义 | 第24-26页 |
1.5.1 ACE抑制肽生物信息学辅助分析平台的构建 | 第24-25页 |
1.5.2 酶膜耦合制备麦胚蛋白ACE抑制肽 | 第25-26页 |
1.6 研究内容 | 第26-27页 |
第二章 ACE抑制肽生物信息学辅助分析平台的初步构建及应用 | 第27-51页 |
2.1 引言 | 第27页 |
2.2 试验材料及设备 | 第27-28页 |
2.2.1 试验材料及试剂 | 第27-28页 |
2.2.2 试验仪器及设备 | 第28页 |
2.3 系统和试验方法 | 第28-33页 |
2.3.1 ACE数据库和分析系统的建立 | 第28-29页 |
2.3.2 ACE抑制肽的生物信息学分析 | 第29-30页 |
2.3.3 ACE抑制活性的测定 | 第30页 |
2.3.4 水解度(DH)测定方法 | 第30-31页 |
2.3.5 肽液浓度的测定 | 第31-32页 |
2.3.6 酪蛋白体外消化试验 | 第32-33页 |
2.3.7 酪蛋白体外酶解试验 | 第33页 |
2.4 结果与讨论 | 第33-50页 |
2.4.1 酶解制备苜蓿Rubisco蛋白ACE抑制肽的生物信息学分析 | 第33-39页 |
2.4.2 酶解制备酪蛋白ACE抑制肽的生物信息学分析 | 第39-46页 |
2.4.3 酪蛋白ACE抑制肤的模拟酶切 | 第46-49页 |
2.4.4 模拟酶切酪蛋白制备ACE抑制肤的验证试验 | 第49-50页 |
2.5 本章小结 | 第50-51页 |
第三章 ACE抑制肽QSAR的构建和酶解制备麦胚ACE抑制肽水解用酶的选定 | 第51-68页 |
3.1 引言 | 第51页 |
3.2 试验材料及设备 | 第51-52页 |
3.2.1 试验材料及试剂 | 第51-52页 |
3.2.2 试验仪器及设备 | 第52页 |
3.3 试验方法 | 第52-57页 |
3.3.1 麦胚蛋白的提取 | 第52页 |
3.3.2 传统酶解反应麦胚蛋白 | 第52-53页 |
3.3.3 反应初速度的确定 | 第53页 |
3.3.4 氨基酸组成分析 | 第53-54页 |
3.3.5 ACE抑制肽QSAR的构建 | 第54-57页 |
3.3.6 ACE抑制活性的测定 | 第57页 |
3.3.7 水解度(DH)测定方法 | 第57页 |
3.4 结果与讨论 | 第57-66页 |
3.4.1 ACE抑制肽QSAR的构建 | 第57-60页 |
3.4.2 麦胚分离蛋白氨基酸组成分析 | 第60-61页 |
3.4.3 蛋白酶的筛选试验结果 | 第61-64页 |
3.4.4 水解麦胚蛋白的动力学探讨 | 第64-66页 |
3.5 本章小结 | 第66-68页 |
第四章 传统酶解反应速率下降原因及酶膜耦合制备麦胚ACE抑制肽系统的建立研究 | 第68-79页 |
4.1 引言 | 第68-69页 |
4.2 试验材料及设备 | 第69页 |
4.2.1 试验材料及试剂 | 第69页 |
4.2.2 试验仪器及设备 | 第69页 |
4.3 试验方法 | 第69-74页 |
4.3.1 传统分批模式酶解反应速率下降原因的研究 | 第69-70页 |
4.3.2 超滤膜的选择 | 第70-71页 |
4.3.3 酶解液ACE抑制活性的测定 | 第71页 |
4.3.4 肽液浓度的测定 | 第71页 |
4.3.5 酶活测定 | 第71-72页 |
4.3.6 酶保留试验 | 第72-73页 |
4.3.7 底物截留试验 | 第73-74页 |
4.4 结果与讨论 | 第74-78页 |
4.4.1 分批模式酶解反应速率下降原因 | 第74-76页 |
4.4.2 酶膜反应器超滤膜的选择 | 第76页 |
4.4.3 酶截留试验及其结果分析 | 第76-77页 |
4.4.4 蛋白截留试验及其结果分析 | 第77-78页 |
4.5 本章小结 | 第78-79页 |
第五章 酶膜耦合反应制备麦胚蛋白ACE抑制肽及其动力学研究 | 第79-92页 |
5.1 引言 | 第79页 |
5.2 试验材料及设备 | 第79-80页 |
5.2.1 试验材料及试剂 | 第79页 |
5.2.2 试验仪器及设备 | 第79-80页 |
5.3 试验方法 | 第80-81页 |
5.3.1 间歇式酶膜耦合反应试验 | 第80页 |
5.3.2 连续式酶膜耦合反应动力学试验 | 第80页 |
5.3.3 ACE抑制活性的测定 | 第80页 |
5.3.4 水解度(DH)测定方法 | 第80-81页 |
5.3.5 肽液浓度的测定方法 | 第81页 |
5.3.6 蛋白转化率的计算方法 | 第81页 |
5.4 结果与讨论 | 第81-91页 |
5.4.1 间歇式酶膜耦合反应单因素试验结果: | 第81-85页 |
5.4.2 连续酶膜耦合反应制备麦胚蛋白ACE抑制肽的动力学 | 第85-91页 |
5.5 本章小结 | 第91-92页 |
第六章 麦胚蛋白水解物的稳定性试验 | 第92-99页 |
6.1 引言 | 第92页 |
6.2 试验材料及设备 | 第92-93页 |
6.2.1 试验材料及试剂 | 第92页 |
6.2.2 试验仪器及设备 | 第92-93页 |
6.3 试验方法 | 第93-94页 |
6.3.1 麦胚蛋白ACE肽的体外消化试验研究 | 第93页 |
6.3.2 麦胚降血压肽模拟肠胃道酶降解的高压液相色谱肽谱图 | 第93页 |
6.3.3 麦胚蛋白ACE肽的热稳定性研究 | 第93页 |
6.3.4 麦胚蛋白ACE肽的酸碱稳定性研究 | 第93-94页 |
6.4 结果与讨论 | 第94-97页 |
6.4.1 麦胚蛋白ACE肽的体外消化试验及其高压液相色谱肽谱图分析 | 第94-95页 |
6.4.2 麦胚蛋白ACE肽的热稳定性的影响 | 第95-96页 |
6.4.3 麦胚蛋白ACE肽的酸碱稳定性研究 | 第96-97页 |
6.5 本章小结 | 第97-99页 |
第七章 工作总结及展望 | 第99-102页 |
7.1 全文主要结论 | 第99-101页 |
7.2 工作展望 | 第101-102页 |
参考文献 | 第102-114页 |
致谢 | 第114-115页 |
攻读硕士学位阶段发表的论文 | 第115页 |