| 中文摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 英文缩略词表 | 第14-15页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 第一部分 白头翁汤正丁醇提取物对白念珠菌定植的小鼠溃疡性结肠炎模型的作用研究 | 第17-40页 |
| 1.实验材料 | 第17-18页 |
| 1.1 实验动物 | 第17页 |
| 1.2 菌株 | 第17页 |
| 1.3 实验药物及试剂 | 第17-18页 |
| 1.4 实验仪器 | 第18页 |
| 1.5 药物配制 | 第18页 |
| 2.实验方法 | 第18-26页 |
| 2.1 白头翁汤正丁醇部位的提取 | 第18-19页 |
| 2.2 白头翁汤正丁醇提取物对白念珠菌最低抑菌浓度（minimum inhibitory concentration，MIC）的测定 | 第19页 |
| 2.3 动物分组 | 第19页 |
| 2.4 造模方法 | 第19页 |
| 2.5 药物治疗 | 第19-20页 |
| 2.6 给药方法 | 第20页 |
| 2.7 检测指标和方法 | 第20-26页 |
| 3.实验结果 | 第26-35页 |
| 3.1 白念珠菌作用的溃疡性结肠炎小鼠模型大体观察 | 第26-30页 |
| 3.2 BAEB对白念珠菌定植的溃疡性结肠炎小鼠的治疗作用 | 第30-35页 |
| 4.讨论 | 第35-40页 |
| 第二部分 白头翁正丁醇提取物对白色念珠菌作用下Caco-2 细胞IL-6、IL-8、IL-1β、HBD-2、HBD-3 及Toll样受体表达的影响 | 第40-55页 |
| 1.实验材料及仪器 | 第40-41页 |
| 1.2 实验药物 | 第40页 |
| 1.3 主要试剂 | 第40页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第40-41页 |
| 1.4.1 PBS缓冲液的配制（pH7.2）： | 第40页 |
| 1.4.2 10%胎牛血清DMEM的配制： | 第40-41页 |
| 1.4.3 MTT的配制： | 第41页 |
| 1.5 主要仪器 | 第41页 |
| 2.实验方法 | 第41-47页 |
| 2.1 白色念珠菌热灭活 | 第41页 |
| 2.2 细胞培养和传代 | 第41-42页 |
| 2.3 细胞冻存和复苏 | 第42页 |
| 2.4 细胞分组 | 第42-43页 |
| 2.5 细胞计数方法 | 第43页 |
| 2.6 甲基噻唑基四唑（methyl thiazolyl tetrazolium,MTT）法检测细胞存活率 | 第43页 |
| 2.7 倒置显微镜观察C.A及BAEB对Caco-2 细胞形态的影响 | 第43-44页 |
| 2.8 ELISA法检测Caco-2 细胞IL-6、IL-8、IL-1β、HBD-2、HBD-3 的分泌量 | 第44页 |
| 2.9 qRT-PCR法检测Caco-2 细胞Toll样受体（TLR1，2，4，5）、Dectin-1 基因的表达 | 第44-46页 |
| 2.10 统计学方法 | 第46-47页 |
| 3.结果 | 第47-51页 |
| 3.1 BAEB对C.A作用下的Caco-2 细胞形态的影响 | 第47-48页 |
| 3.2 MTT法检测BAEB对Caco-2 细胞活性的影响 | 第48-50页 |
| 3.3 BAEB对C.A作用下的Caco-2 细胞上清液中IL-8、IL-6、IL-1β、HBD-2、HBD3表达量的影响 | 第50页 |
| 3.4 qRT-PCR检测BAEB对C.A作用下Caco-2 细胞TLRs及Dectin-1 基因表达的影响 | 第50-51页 |
| 4.讨论 | 第51-54页 |
| 5.结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-59页 |
| 综述 | 第59-73页 |
| 参考文献 | 第67-73页 |
| 附录 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
