| 缩略语及符号 | 第6-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| 英文摘要 | 第11-13页 |
| (一)、前言 | 第14-19页 |
| (二)、材料和方法 | 第19-33页 |
| 1. 免疫荧光组织化学 | 第19-21页 |
| 1.1 神经节细胞的逆行标记 | 第19页 |
| 1.2 免疫组织化学标本的制备 | 第19页 |
| 1.3 免疫荧光组织化学反应 | 第19-21页 |
| 1.4 共聚焦激光扫描显微镜观察 | 第21页 |
| 2. Western blot分析 | 第21-22页 |
| 3. RT-PCR分析 | 第22页 |
| 4. 大鼠视网膜薄片标本的膜片钳记录 | 第22-26页 |
| 4.1 大鼠视网膜薄片标本的制备 | 第22-23页 |
| 4.2 视网膜薄片标本膜片钳记录的实验装置 | 第23-26页 |
| 4.2.1 灌流和加药系统 | 第23-24页 |
| 4.2.2 成像系统 | 第24页 |
| 4.2.3 刺激系统 | 第24-25页 |
| 4.2.4 记录系统 | 第25-26页 |
| 5. 钙成像 | 第26-28页 |
| 5.1 钙成像的原理 | 第26-27页 |
| 5.2 钙成像标本的制备 | 第27页 |
| 5.3 钙成像的数据采集 | 第27-28页 |
| 6. 溶液和药品 | 第28-29页 |
| 6.1 常规溶液 | 第28-29页 |
| 6.1.1 细胞外液 | 第28-29页 |
| 6.1.2 电极内液 | 第29页 |
| 6.2 酶解液的配制 | 第29页 |
| 6.3 实验中所用的工具药配制 | 第29页 |
| 7. 数据分析处理 | 第29-33页 |
| (三)、实验结果 | 第33-53页 |
| 1. σR1在大鼠视网膜上的分布 | 第33-41页 |
| 1.1 σR1 mRNA在大鼠视网膜中的表达 | 第33页 |
| 1.2 σR1抗体的特异性 | 第33-34页 |
| 1.3 σR1在大鼠视网膜上的分布 | 第34-35页 |
| 1.4 σR1在水平细胞和双极细胞上的表达 | 第35-37页 |
| 1.5 σR1在无长突细胞上的分布 | 第37-39页 |
| 1.6 σR1在神经节细胞上的表达 | 第39-40页 |
| 1.7 小结 | 第40-41页 |
| 2. σR1的激活对大鼠视网膜ON GC上AMPA受体介导的光刺激诱发的兴奋性突触后电流的调节 | 第41-45页 |
| 2.1 大鼠视网膜ON GC的鉴定 | 第41-42页 |
| 2.2 大鼠ON GC上AMPAR介导的光刺激诱发的兴奋性突触后电流的鉴定 | 第42-43页 |
| 2.3 σR1的激活压抑AMPAR介导的L-eEPSC | 第43-45页 |
| 2.4 σR1的激活不影响突触前BC谷氨酸的释放 | 第45页 |
| 3. σR1压抑AMPAR介导的L-eEPSC的胞内机制 | 第45-53页 |
| 3.1 G蛋白参与SKF压抑AMPAR介导的L-eEPSC | 第45-46页 |
| 3.2 PLC/PKC通路不参与SKF压抑AMPAR介导的L-eEPSC的作用 | 第46-49页 |
| 3.3 PKG和PKA通路对SKF压抑AMPAR介导的L-eEPSC的影响 | 第49-50页 |
| 3.4 钙离子对SKF压抑AMPAR介导的L-eEPSC的影响 | 第50-53页 |
| (四)、讨论 | 第53-59页 |
| 1. σR1在大鼠视网膜上的表达 | 第53页 |
| 2. SKF激活σR1压抑AMPAR介导的L-eEPSC | 第53-54页 |
| 3. σR1激活不影响BC谷氨酸的释放 | 第54-55页 |
| 4. σR1激活压抑L-eEPSC的胞内机制 | 第55-56页 |
| 5. σR1在视网膜中可能具有的功能 | 第56-59页 |
| (五)、总结 | 第59-60页 |
| (六)、参考文献 | 第60-77页 |
| 综述 | 第77-99页 |
| 参考文献 | 第89-99页 |
| 后记 | 第99-102页 |
| (一)、学习期间完成的论文、摘要和获得奖项 | 第99-100页 |
| (二)、致谢 | 第100-102页 |
