| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 符号与缩写 | 第12-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-23页 |
| 1.1 精神分裂症的小胶质细胞假说 | 第14-16页 |
| 1.2 小胶质细胞的活化 | 第16-18页 |
| 1.3 精神分裂症的抗炎治疗 | 第18-20页 |
| 1.4 非典型抗精神病药物与小胶质细胞 | 第20-23页 |
| 第二章 在体实验部分 | 第23-43页 |
| 2.1 背景介绍 | 第23-24页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第24-25页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第24页 |
| 2.2.2 实验试剂与耗材 | 第24-25页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第25页 |
| 2.2.4 溶液的配置 | 第25页 |
| 2.3 实验方法 | 第25-31页 |
| 2.3.1 实验动物分组 | 第25-26页 |
| 2.3.2 腹腔注射大鼠系统验证模型的建立 | 第26页 |
| 2.3.3 实验切片的制作 | 第26页 |
| 2.3.4 免疫荧光检测 | 第26-27页 |
| 2.3.5 大鼠在体细胞蛋白提取 | 第27页 |
| 2.3.6 BCA法测蛋白浓度 | 第27-28页 |
| 2.3.7 Western blot法检测蛋白表达 | 第28-29页 |
| 2.3.8 Oxyblot法检测蛋白浓度 | 第29-30页 |
| 2.3.9 RNA的提取 | 第30页 |
| 2.3.10 逆转录 | 第30-31页 |
| 2.4 数据统计方法 | 第31页 |
| 2.5 实验结果 | 第31-39页 |
| 2.5.1 腹腔注射LPS诱导大鼠系统炎性模型的建立 | 第31-33页 |
| 2.5.2 腹腔注射LPS对纹状体部位iNOS表达的作用 | 第33-34页 |
| 2.5.3 药物对LPS引起的小胶质细胞iNOS表达的作用 | 第34-36页 |
| 2.5.4 腹腔注射LPS对小胶质细胞NOX2亚单位gp91phox的影响 | 第36-37页 |
| 2.5.5 药物对LPS引起的在体蛋白氧化产物的影响 | 第37-38页 |
| 2.5.6 药物对LPS引起的在体小胶质细胞iNOSmRNA表达的影响 | 第38-39页 |
| 2.6 讨论 | 第39-42页 |
| 2.7 小结 | 第42-43页 |
| 第三章 离体实验部分 | 第43-57页 |
| 3.1 前言 | 第43-44页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第44-46页 |
| 3.2.1 实验细胞株 | 第44页 |
| 3.2.2 实验试剂与耗材 | 第44-45页 |
| 3.2.3 实验仪器 | 第45页 |
| 3.2.4 溶液的配置 | 第45-46页 |
| 3.3 实验方法 | 第46-49页 |
| 3.3.1 小胶质细胞的培养 | 第46页 |
| 3.3.2 细胞的冻存 | 第46页 |
| 3.3.3 细胞的复苏 | 第46-47页 |
| 3.3.4 MTT法检测细胞活性 | 第47页 |
| 3.3.5 ELISA法测NO浓度 | 第47-48页 |
| 3.3.6 细胞蛋白提取 | 第48页 |
| 3.3.7 BCA法测蛋白浓度 | 第48页 |
| 3.3.8 Western blot操作步骤 | 第48页 |
| 3.3.9 Oxyblot操作步骤 | 第48页 |
| 3.3.10 RNA提取 | 第48-49页 |
| 3.3.11 逆转录 | 第49页 |
| 3.3.12 数据分析方法 | 第49页 |
| 3.4 结果 | 第49-54页 |
| 3.4.1 MTT法测药物对小胶质细胞生存率的影响 | 第49-50页 |
| 3.4.2 药物对小胶质细胞活化后释放NO浓度的影响 | 第50-51页 |
| 3.4.3 齐拉西酮对小胶质iNOS表达的影响 | 第51-52页 |
| 3.4.4 齐拉西酮对小胶质细胞氧化蛋白表达的影响 | 第52页 |
| 3.4.5 LPS和齐拉西酮对gp91~(phox)表达作用的影响 | 第52-53页 |
| 3.4.6 齐拉西酮对小胶质细胞iNOS mRNA表达作用的影响 | 第53-54页 |
| 3.5 讨论 | 第54-56页 |
| 3.6 小结 | 第56-57页 |
| 第四章 总结 | 第57-59页 |
| 4.1 主要工作与创新点 | 第57页 |
| 4.2 后续研究工作 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
