缩略语表 | 第5-6页 |
中文摘要 | 第6-9页 |
英文摘要 | 第9-11页 |
前言 | 第12-13页 |
文献回顾 | 第13-23页 |
第一部分 葡萄糖通过HBP途径影响子宫内膜癌细胞内Wnt/β-catenin通路 | 第23-45页 |
1 材料 | 第23-26页 |
1.1 细胞培养试剂 | 第23页 |
1.2 抗体 | 第23页 |
1.3 试剂盒 | 第23-24页 |
1.4 其他试剂 | 第24页 |
1.5 主要仪器设备和耗材 | 第24-25页 |
1.6 试剂配制 | 第25-26页 |
2 方法 | 第26-33页 |
2.1 细胞培养 | 第26-27页 |
2.2 葡萄糖及其他试剂处理子宫内膜癌细胞 | 第27-28页 |
2.3 细胞转染 | 第28页 |
2.4 Western Blot检测蛋白表达 | 第28-32页 |
2.5 免疫共沉淀检测O-GlcNAc和 β-catenin | 第32-33页 |
2.6 Real-time PCR检测 | 第33页 |
2.7 实验结果的统计学处理 | 第33页 |
3 结果 | 第33-41页 |
3.1 子宫内膜癌细胞内 β-catenin的表达量与葡萄糖浓度相关 | 第33-35页 |
3.2 葡萄糖通过HBP调节子宫内膜癌细胞内 β-catenin表达量 | 第35-38页 |
3.3 HBP通过升高 β-catenin的O-GlcNAylation水平来增加其表达量 | 第38-39页 |
3.4 葡萄糖介导的 β-catenin升高对Wnt通路的影响 | 第39-40页 |
3.5 葡萄糖介导的增高的 β-catenin蛋白能够进入细胞核激活下游靶基因 | 第40-41页 |
4 讨论 | 第41-45页 |
第二部分 葡萄糖通过HBP途径增加SD大鼠子宫内膜细胞内 β-catenin表达量 | 第45-61页 |
1 材料 | 第45-48页 |
1.1 抗体 | 第45页 |
1.2 试剂盒 | 第45页 |
1.3 其他主要生化试剂、药品 | 第45-46页 |
1.4 主要仪器设备和耗材 | 第46-47页 |
1.5 试剂配制 | 第47-48页 |
2 方法 | 第48-53页 |
2.1 实验动物及分组 | 第48-49页 |
2.2 Western Blot检测蛋白表达 | 第49-53页 |
2.3 Real-time PCR检测 | 第53页 |
2.4 实验结果的统计学处理 | 第53页 |
3 结果 | 第53-58页 |
3.1 NC组和HSHF组的空腹血糖、β-catenin表达量及O-GlcNAc水平的比较 | 第53-55页 |
3.2 β-catenin表达量及O-GlcNAc水平在FASTING组、GLN组和GLU组中的比较 | 第55-57页 |
3.3 RT-PCR检测NC组和HSHF组中 β-catenin m RNA水平及 β-catenin特异性靶基因表达水平 | 第57-58页 |
4 讨论 | 第58-61页 |
小结 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-71页 |
个人简历和研究成果 | 第71-72页 |
致谢 | 第72页 |