| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第15-40页 |
| 1.1 生物传感器 | 第16-18页 |
| 1.1.1 生物传感器概述 | 第16-17页 |
| 1.1.2 荧光纳米生物传感器 | 第17-18页 |
| 1.2 量子点概述 | 第18-28页 |
| 1.2.1 量子点的基本特性 | 第18-23页 |
| 1.2.2 量子点的合成 | 第23-26页 |
| 1.2.3 量子点的应用及其前景 | 第26-28页 |
| 1.3 CuInS_2量子点 | 第28-37页 |
| 1.3.1 量子点的毒性研究 | 第28-32页 |
| 1.3.2 CuInS_2量子点的研究与应用 | 第32-37页 |
| 1.4 本论文的研究意义及主要内容 | 第37-40页 |
| 第二章 基于CuInS_2量子点构建的一种新型荧光纳米生物传感器用于检测肝素与肝素酶 | 第40-55页 |
| 2.1 实验部分 | 第41-44页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第41页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第41-42页 |
| 2.1.3 CuInS_2量子点的制备 | 第42页 |
| 2.1.4 肝素的检测 | 第42页 |
| 2.1.5 肝素酶的检测 | 第42-43页 |
| 2.1.6 胎牛血清样品中肝素的检测 | 第43页 |
| 2.1.7 甲苯胺蓝法测定肝素 | 第43页 |
| 2.1.8 胎牛血清样品中肝素酶的检测 | 第43-44页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第44-54页 |
| 2.2.1 肝素与肝素酶的检测机理 | 第44-45页 |
| 2.2.2 实验条件优化 | 第45-47页 |
| 2.2.3 肝素的检测 | 第47-48页 |
| 2.2.4 肝素酶的检测 | 第48-50页 |
| 2.2.5 共振光散射实验 | 第50-51页 |
| 2.2.6 共存组分的影响 | 第51-52页 |
| 2.2.7 胎牛血清中肝素与肝素酶的测定 | 第52-54页 |
| 2.3 本章小结 | 第54-55页 |
| 第三章 新型近红外荧光纳米生物传感器用于检测葡萄糖与氟离子 | 第55-72页 |
| 3.1 实验部分 | 第56-58页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第56页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第56页 |
| 3.1.3 APBA-CuInS_2 QDs的制备 | 第56-57页 |
| 3.1.4 葡萄糖的检测 | 第57页 |
| 3.1.5 氟离子的检测 | 第57页 |
| 3.1.6 血清样品中葡萄糖的检测 | 第57-58页 |
| 3.1.7 水样中氟离子的检测 | 第58页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第58-71页 |
| 3.2.1 APBA-CuInS_2 QDs的表征 | 第58-61页 |
| 3.2.2 APBA-CuInS_2 QDs、葡萄糖、氟离子之间的相互作用 | 第61-62页 |
| 3.2.3 实验条件优化 | 第62-65页 |
| 3.2.4 葡萄糖与氟离子的检测 | 第65-68页 |
| 3.2.5 共存组分的影响 | 第68-69页 |
| 3.2.6 实样测定 | 第69-71页 |
| 3.3 本章小结 | 第71-72页 |
| 第四章 免标记型DNA-CuInS_2 QDs纳米生物传感器用于超灵敏检测炭疽致死因子DNA | 第72-90页 |
| 4.1 实验部分 | 第74-77页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第74页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第74-75页 |
| 4.1.3 一锅法水热合成DNA-CuInS_2 QDs | 第75页 |
| 4.1.4 量子产率测定 | 第75-76页 |
| 4.1.5 氧化石墨烯的制备 | 第76页 |
| 4.1.6 炭疽致死因子DNA的检测 | 第76页 |
| 4.1.7 血清样品中炭疽致死因子DNA的检测 | 第76-77页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第77-89页 |
| 4.2.1 炭疽致死因子DNA的检测机理 | 第77-83页 |
| 4.2.2 实验条件优化 | 第83-86页 |
| 4.2.3 炭疽致死因子DNA的检测 | 第86-87页 |
| 4.2.4 序列选择性与共存组分的影响 | 第87-88页 |
| 4.2.5 血清样品中炭疽致死因子DNA的检测 | 第88-89页 |
| 4.3 本章小结 | 第89-90页 |
| 第五章 基于寡核苷酸功能化的CuInS_2量子点／Fe_3O_4纳米粒子构建的超灵敏传感器用于砷酸根离子的检测与移除 | 第90-105页 |
| 5.1 实验部分 | 第91-94页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第91-92页 |
| 5.1.2 实验仪器 | 第92页 |
| 5.1.3 ssDNA-CuInS_2 QDs的制备 | 第92-93页 |
| 5.1.4 Fe_3O_4 NPs的制备 | 第93页 |
| 5.1.5 Fe_3O_4 NPs对ssDNA-CuInS_2 QDs的荧光淬灭实验 | 第93页 |
| 5.1.6 砷酸根离子的检测 | 第93-94页 |
| 5.1.7 水样中砷酸根离子的检测 | 第94页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第94-104页 |
| 5.2.1 ssDNA-CuInS_2 QDs@Fe_3O_4 NPs和砷酸根离子之间的相互作用 | 第94-96页 |
| 5.2.2 实验条件优化 | 第96-99页 |
| 5.2.3 Fe_3O_4 NPs对ssDNA-CuInS_2 QDs的荧光淬灭作用 | 第99-100页 |
| 5.2.4 砷酸根离子的检测 | 第100-103页 |
| 5.2.5 共存组分的影响 | 第103页 |
| 5.2.6 水样中砷酸根离子的检测 | 第103-104页 |
| 5.3 本章小结 | 第104-105页 |
| 第六章 基于壳聚糖包裹的CuInS_2量子点／金纳米粒子构建的免标记型生物传感器用于检测凝集素 | 第105-122页 |
| 6.1 实验部分 | 第106-108页 |
| 6.1.1 实验材料 | 第106页 |
| 6.1.2 实验仪器 | 第106-107页 |
| 6.1.3 羧甲基壳聚糖包裹的CuInS_2量子点（CM-CHIT-CuInS_2 QDs）的制备 | 第107页 |
| 6.1.4 AuNPs的制备 | 第107页 |
| 6.1.5 荧光淬灭实验 | 第107页 |
| 6.1.6 刀豆球蛋白A的测定 | 第107-108页 |
| 6.1.7 圆二色光谱测定 | 第108页 |
| 6.1.8 胎牛血清中刀豆球蛋白A的测定 | 第108页 |
| 6.2 结果与讨论 | 第108-121页 |
| 6.2.1 刀豆球蛋白A的检测机理 | 第108-111页 |
| 6.2.2 共振光散射与圆二色光谱测定 | 第111-112页 |
| 6.2.3 AuNPs对羧甲基壳聚糖包裹的CuInS_2量子点的荧光淬灭作用 | 第112-114页 |
| 6.2.4 实验条件优化 | 第114-117页 |
| 6.2.5 刀豆球蛋白A的检测 | 第117-119页 |
| 6.2.6 共存组分的影响 | 第119-120页 |
| 6.2.7 胎牛血清中刀豆球蛋白A的检测 | 第120-121页 |
| 6.3 本章小结 | 第121-122页 |
| 参考文献 | 第122-143页 |
| 作者简介 | 第143页 |
| 攻读博士学位期间所取得的科研成果 | 第143-147页 |
| 致谢 | 第147-148页 |
