| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 第一章 综述 | 第12-29页 |
| 1、皮肤伤口愈合 | 第12-19页 |
| 1.1 皮肤的结构与功能 | 第12-13页 |
| 1.2 正常皮肤伤口愈合 | 第13-15页 |
| 1.3 糖尿病皮肤伤口愈合 | 第15-19页 |
| 2、REG3A | 第19-21页 |
| 2.1 REG3A与糖尿病伤口 | 第20-21页 |
| 3、MicroRNAs与伤口愈合 | 第21-26页 |
| 3.1 miRNA的定义及功能 | 第21-22页 |
| 3.2 miRNAs的加工与成熟 | 第22-23页 |
| 3.3 miRNA的调节 | 第23-24页 |
| 3.4 miRNA在正常伤口愈合中的作用 | 第24-25页 |
| 3.5 miRNA在糖尿病伤口愈合中的作用 | 第25-26页 |
| 4、miR137 | 第26-27页 |
| 4.1 miR137的功能以及调节 | 第26-27页 |
| 5、展望 | 第27-29页 |
| 第二章 MiRNA-137调节REG3A抑制角质形成细胞增殖的功能机制 | 第29-62页 |
| 1、引言 | 第29-31页 |
| 2、实验材料和方法 | 第31-45页 |
| 2.1 实验材料 | 第31-33页 |
| 2.1.1 实验动物、细胞 | 第31页 |
| 2.1.2 细胞培养试剂 | 第31页 |
| 2.1.3 分子生物试剂 | 第31页 |
| 2.1.4 实验主要仪器 | 第31-32页 |
| 2.1.5 引物 | 第32页 |
| 2.1.6 抗体 | 第32-33页 |
| 2.2 实验方法 | 第33-45页 |
| 2.2.1 质粒载体的构建 | 第33-35页 |
| 2.2.2 小鼠伤口和糖尿病模型 | 第35页 |
| 2.2.3 小鼠组织样品的RNA抽提 | 第35-36页 |
| 2.2.4 小鼠伤口表皮分离 | 第36页 |
| 2.2.5 细胞的培养 | 第36-38页 |
| 2.2.6 RNA的抽提、反转录以及定量PCR | 第38-39页 |
| 2.2.7 免疫印迹 | 第39-43页 |
| 2.2.8 荧光素酶(Luciferase)报告基因 | 第43页 |
| 2.2.9 细胞划痕实验 | 第43-44页 |
| 2.2.10 实验数据分析 | 第44-45页 |
| 3、实验结果与分析 | 第45-60页 |
| 3.1 miRNA137靶向REG3A抑制REG3A表达 | 第45-50页 |
| 3.2 miR137参与调节IL-33诱导的REG3A的表达,从而抑制角质形成细胞的增殖 | 第50-52页 |
| 3.3 高糖在角质形成细胞中诱导miR137的表达 | 第52-54页 |
| 3.4 p53参与IL-33、高糖对miR137的调节 | 第54-59页 |
| 3.5 DNA的甲基化参与IL-33对miR137的调节 | 第59-60页 |
| 4、讨论 | 第60-62页 |
| 第三章 总结 | 第62-64页 |
| 附录 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-77页 |
| 致谢 | 第77页 |
