| 摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 前言 | 第8-29页 |
| 1.1 γ-氨基丁酸受体的概述 | 第8-14页 |
| 1.1.1 哺乳动物GABA受体介绍 | 第8-10页 |
| 1.1.2 鱼类GABA受体的研究 | 第10-13页 |
| 1.1.3 昆虫体内GABA受体的研究进展 | 第13-14页 |
| 1.2 GABA受体分离与纯化方法 | 第14-22页 |
| 1.2.1 细胞破碎和蛋白质溶解 | 第15-17页 |
| 1.2.2 蛋白质浓度测定 | 第17-18页 |
| 1.2.3 蛋白质溶液的浓缩 | 第18页 |
| 1.2.4 GABA受体粗提液的分离纯化方法 | 第18-22页 |
| 1.3 受体与配基结合分析 | 第22-26页 |
| 1.3.1 受体与配基结合分析方法 | 第24-26页 |
| 1.4 氟虫腈(氟虫腈)毒性 | 第26-28页 |
| 1.5 论文的研究内容，目的及意义 | 第28-29页 |
| 1.5.1 论文的研究内容 | 第28页 |
| 1.5.2 论文的目的及意义 | 第28-29页 |
| 第二章 鳙鱼脑内GABA受体的分离纯化方法 | 第29-43页 |
| 2.1 实验部分 | 第30-33页 |
| 2.1.1 试剂 | 第30-31页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第31-32页 |
| 2.1.3 缓冲液的配制 | 第32-33页 |
| 2.2 实验方法 | 第33-39页 |
| 2.2.1 Ro7-1986/1 亲和柱和氟虫腈亲和柱的制备 | 第33-35页 |
| 2.2.3 溶出GABA受体的制备 | 第35页 |
| 2.2.4 溶出GABA受体制备物的透析和超滤 | 第35页 |
| 2.2.5 浓缩GABA受体制备物的亲和层析 | 第35-36页 |
| 2.2.6 亲和层析后GABA受体的离子交换层析 | 第36页 |
| 2.2.7 Bradford法测定GABA受体蛋白浓度 | 第36-37页 |
| 2.2.8 聚丙烯酰胺凝胶电泳对GABA受体亚基的鉴定 | 第37-39页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第39-41页 |
| 2.3.1 亲和介质的表征 | 第39-40页 |
| 2.3.2 去垢剂对GABA受体的溶出效率 | 第40页 |
| 2.3.3 两种亲和介质分离效率比较 | 第40-41页 |
| 2.4 结论 | 第41-43页 |
| 第三章 荧光标记法研究受体结合试验 | 第43-56页 |
| 3.1 实验部分 | 第44-45页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第44页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第44-45页 |
| 3.2 实验过程 | 第45-48页 |
| 3.2.0 FITC-Ro7 荧光配体的制备[31] | 第45页 |
| 3.2.1 FITC-氟虫腈荧光配体的制备 | 第45-46页 |
| 3.2.2 鳙鱼脑GABA受体粗提物的制备[12] | 第46页 |
| 3.2.3 荧光配体结合实验 | 第46-48页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第48-55页 |
| 3.3.1 荧光配体的合成 | 第48-49页 |
| 3.3.2 荧光标记法结合常数的测定 | 第49-54页 |
| 3.3.3 GABA竞争性取代试验 | 第54-55页 |
| 3.4 小结 | 第55-56页 |
| 第四章 结论、展望与创新 | 第56-60页 |
| 4.1 结论 | 第56-57页 |
| 4.2 展望 | 第57-58页 |
| 4.3 创新 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 作者简介 | 第70页 |
| 专利及论文发表情况 | 第70-72页 |
| 附件 | 第72页 |
