| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 第1章 文献综述 | 第16-24页 |
| 1.1 桔梗 | 第16页 |
| 1.2 多糖 | 第16-18页 |
| 1.2.1 多糖的生物活性 | 第16-18页 |
| 1.2.2 桔梗多糖 | 第18页 |
| 1.3 硒 | 第18-21页 |
| 1.3.1 硒的生物活性 | 第19-20页 |
| 1.3.2 补硒现状 | 第20-21页 |
| 1.3.3 硒的毒性 | 第21页 |
| 1.4 纳米硒 | 第21-23页 |
| 1.4.1 纳米硒的生物活性 | 第22页 |
| 1.4.2 纳米硒的尺寸效应 | 第22页 |
| 1.4.3 纳米硒的制备 | 第22-23页 |
| 1.5 多糖为模板制备纳米硒 | 第23-24页 |
| 第2章 纳米硒的制备工艺研究 | 第24-34页 |
| 2.1 仪器与材料 | 第24-25页 |
| 2.1.1 仪器 | 第24-25页 |
| 2.1.2 试剂 | 第25页 |
| 2.1.3 材料 | 第25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-28页 |
| 2.2.1 纳米硒-桔梗多糖复合物的合成 | 第25页 |
| 2.2.2 双波长的选择 | 第25-26页 |
| 2.2.3 桔梗多糖浓度对纳米硒形成的影响 | 第26页 |
| 2.2.4 Vc和Na_2SeO_3配比对纳米硒形成的影响 | 第26页 |
| 2.2.5 反应温度对纳米硒形成的影响 | 第26页 |
| 2.2.6 反应时间对纳米硒形成的影响 | 第26页 |
| 2.2.7 表征手段 | 第26-27页 |
| 2.2.8 硒含量测定 | 第27-28页 |
| 2.2.9 急性毒性试验 | 第28页 |
| 2.3 结果与分析 | 第28-33页 |
| 2.3.1 双波长的选择结果 | 第28-29页 |
| 2.3.2 多糖浓度对纳米硒形成的影响结果 | 第29页 |
| 2.3.3 Vc和Na_2SeO_3配比对纳米硒形成的影响结果 | 第29-30页 |
| 2.3.4 反应温度对纳米硒形成的影响结果 | 第30-31页 |
| 2.3.5 反应时间对纳米硒形成的影响结果 | 第31页 |
| 2.3.6 电镜表征 | 第31-32页 |
| 2.3.7 X射线衍射分析 | 第32页 |
| 2.3.8 硒含量测定结果 | 第32-33页 |
| 2.3.9 急毒实验结果分析 | 第33页 |
| 2.4 结论 | 第33-34页 |
| 第3章 纳米硒-桔梗多糖的抗氧化活性研究 | 第34-42页 |
| 3.1 仪器与材料 | 第34-35页 |
| 3.1.1 仪器 | 第34页 |
| 3.1.2 试剂 | 第34-35页 |
| 3.1.3 材料 | 第35页 |
| 3.2 方法 | 第35-38页 |
| 3.2.1 对超氧阴离子自由基的清除作用 | 第35-36页 |
| 3.2.2 对羟基自由基的清除作用 | 第36-37页 |
| 3.2.3 对DPPH自由基清除作用 | 第37页 |
| 3.2.4 还原性实验 | 第37-38页 |
| 3.3 结果与分析 | 第38-41页 |
| 3.3.1 对超氧阴离子自由基的清除作用结果 | 第38-39页 |
| 3.3.2 对羟基自由基的清除作用结果 | 第39页 |
| 3.3.3 对DPPH自由基的清除作用结果 | 第39-40页 |
| 3.3.4 还原性实验结果 | 第40-41页 |
| 3.4 结论 | 第41-42页 |
| 第4章 纳米硒-桔梗多糖的降糖活性研究 | 第42-50页 |
| 4.1 仪器与材料 | 第42-43页 |
| 4.1.1 仪器 | 第42页 |
| 4.1.2 试剂 | 第42-43页 |
| 4.1.3 材料 | 第43页 |
| 4.1.4 实验动物 | 第43页 |
| 4.2 方法 | 第43-46页 |
| 4.2.1 动物模型的建立与给药 | 第43-44页 |
| 4.2.2 主要试剂配制 | 第44页 |
| 4.2.3 指标的检测 | 第44-46页 |
| 4.2.4 统计学方法 | 第46页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第46-49页 |
| 4.3.1 小鼠外观的变化 | 第46页 |
| 4.3.2 小鼠体重的变化结果 | 第46-47页 |
| 4.3.3 血糖的变化结果 | 第47-48页 |
| 4.3.4 血清中MDA含量和GSH-Px活性测定结果 | 第48-49页 |
| 4.4 结论 | 第49-50页 |
| 第5章 纳米硒-桔梗多糖对CCl_4诱导小鼠急性肝损伤的保护作用 | 第50-60页 |
| 5.1 仪器与材料 | 第50-51页 |
| 5.1.1 仪器 | 第50-51页 |
| 5.1.2 试剂 | 第51页 |
| 5.1.3 材料 | 第51页 |
| 5.1.4 实验动物 | 第51页 |
| 5.2 方法 | 第51-55页 |
| 5.2.1 动物模型的建立 | 第51-52页 |
| 5.2.2 主要试剂配制 | 第52页 |
| 5.2.3 蛋白质标准曲线绘制 | 第52-53页 |
| 5.2.4 血清各项指标检测 | 第53页 |
| 5.2.5 肝组织中MDA和GSH含量测定 | 第53-55页 |
| 5.2.6 组织形态学考察 | 第55页 |
| 5.2.7 统计学方法 | 第55页 |
| 5.3 实验结果与讨论 | 第55-59页 |
| 5.3.1 小鼠肝重指数 | 第55-56页 |
| 5.3.2 血清中各种酶含量测定结果 | 第56-57页 |
| 5.3.3 蛋白质标准曲线绘制 | 第57页 |
| 5.3.4 对肝组织中GSH、MDA的含量测定结果 | 第57-58页 |
| 5.3.5 组织病理学考察 | 第58-59页 |
| 5.4 结论 | 第59-60页 |
| 结论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 英文缩写 | 第67-68页 |
| 攻读学位期间发表的学术成果 | 第68页 |
