| 中英文缩略词 | 第7-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 第一部分：阿司匹林联合活血化瘀中成药治疗冠心病的Meta分析 | 第15-37页 |
| 1.前言 | 第15页 |
| 2.资料与方法 | 第15-18页 |
| 3.结果 | 第18-31页 |
| 4.讨论 | 第31-33页 |
| 5.结论 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-37页 |
| 第二部分：ASP联合银杏叶提取物对活化血小板刺激内皮细胞产生炎症反应指标的影响 | 第37-66页 |
| 实验流程图 | 第37页 |
| 1.前言 | 第37-39页 |
| 2.材料与方法 | 第39-49页 |
| 2.1 实验材料 | 第39-44页 |
| 2.1.1 细胞 | 第39页 |
| 2.1.2 仪器设备 | 第39-40页 |
| 2.1.3 试剂 | 第40-42页 |
| 2.1.4 常用液体配制 | 第42-44页 |
| 2.2 实验方法 | 第44-49页 |
| 2.2.1 制备活化血小板 | 第44页 |
| 2.2.1.1 分离血小板 | 第44页 |
| 2.2.1.2 活化血小板 | 第44页 |
| 2.2.1.3 测定血小板活化度 | 第44页 |
| 2.2.2 人冠状动脉内皮细胞培养 | 第44-45页 |
| 2.2.3 实验设计 | 第45页 |
| 2.2.3.1 阿司匹林作用组 | 第45页 |
| 2.2.3.2 银杏叶提取物作用组 | 第45页 |
| 2.2.3.3 ASP联合EGb作用组 | 第45页 |
| 2.2.4 酶联免疫吸附试验(ELISA)测定IL-6和VAP-1 | 第45-47页 |
| 2.2.4.1 收集细胞培养上清液 | 第45-46页 |
| 2.2.4.2 ELISA测定IL-6 | 第46页 |
| 2.2.4.3 ELISA测定VAP-1 | 第46-47页 |
| 2.2.5 Western Blot测定p-p65 | 第47-49页 |
| 2.2.5.1 提蛋白 | 第47-48页 |
| 2.2.5.2 BCA蛋白定量的方法进行蛋白定量 | 第48页 |
| 2.2.5.3 Western Blot法检测p-p65的表达量 | 第48-49页 |
| 2.2.6 统计学分析 | 第49页 |
| 3.结果与分析 | 第49-57页 |
| 3.1 不同浓度ADP刺激后的血小板活化度 | 第49-50页 |
| 3.2 阿司匹林抑制活化血小板诱导的IL-6和VAP-1的生成 | 第50页 |
| 3.3 EGB抑制活化血小板刺激的IL-6和VAP-1的生成 | 第50-51页 |
| 3.4 EGb联合阿司匹林抑制活化血小板诱导IL-6和VAP-1表达 | 第51-53页 |
| 3.5 活化血小板诱导HCAECs中p-p65的表达 | 第53-54页 |
| 3.6 阿司匹林抑制活化血小板诱导的p-p65的生成 | 第54-55页 |
| 3.7 EGb抑制活化血小板刺激的p-p65的生成 | 第55-56页 |
| 3.8 ASP联合EGB抑制活化血小板诱导P-P65表达 | 第56-57页 |
| 4.讨论 | 第57-59页 |
| 5.结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-66页 |
| 附录 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 综述 | 第68-78页 |
| 参考文献 | 第74-78页 |
