| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 文献综述 | 第12-23页 |
| 第一章 RCS细胞毒性机制的研究进展 | 第12-23页 |
| 1.1 RCS细胞毒性的研究进展 | 第12-19页 |
| 1.1.1 RCS的来源及羰基应激 | 第12-16页 |
| 1.1.2 RCS、氧化应激与细胞毒性 | 第16-19页 |
| 1.2 氧化损伤导致细胞能量代谢障碍 | 第19-21页 |
| 1.3 能量代谢障碍诱导细胞毒性的研究进展 | 第21-22页 |
| 1.4 研究假设 | 第22-23页 |
| 试验研究 | 第23-46页 |
| 第二章 两种RCS对BRL 3A和 3T3-L1细胞的毒性及氧化损伤机制 | 第23-35页 |
| 2.1 试验材料及仪器 | 第23-25页 |
| 2.1.1 材料 | 第23页 |
| 2.1.2 试验主要试剂及配制 | 第23-24页 |
| 2.1.3 试验仪器 | 第24-25页 |
| 2.2 试验方法 | 第25-28页 |
| 2.2.1 BRL 3A和 3T3-L1细胞的培养 | 第25-26页 |
| 2.2.2 细胞生长曲线和毒性的测定 | 第26页 |
| 2.2.3 DCFH-DA法检测ROS | 第26-27页 |
| 2.2.4 细胞H_2O_2含量的检测 | 第27页 |
| 2.2.5 LPO产物丙二醛的检测 | 第27页 |
| 2.2.6 MMP的检测 | 第27页 |
| 2.2.7 数据分析 | 第27-28页 |
| 2.3 试验结果 | 第28-29页 |
| 2.3.1 BRL 3A细胞生长曲线和 3T3-L1细胞分化形态鉴定 | 第28页 |
| 2.3.2 两种RCS的细胞毒性 | 第28页 |
| 2.3.3 两种RCS诱导的BRL 3A和 3T3-L1细胞氧化应激 | 第28-29页 |
| 2.3.4 两种RCS对细胞MMP的影响 | 第29页 |
| 2.4 讨论 | 第29-30页 |
| 2.5 小结 | 第30-31页 |
| 附表 | 第31-35页 |
| 第三章 GO对BRL 3A细胞能量代谢的影响 | 第35-46页 |
| 3.1 材料 | 第35-37页 |
| 3.1.1 主要试剂及配制 | 第35-36页 |
| 3.1.2 试验仪器 | 第36-37页 |
| 3.2 试验方法 | 第37-39页 |
| 3.2.1 高效液相法检测BRL 3A细胞ATP含量 | 第37页 |
| 3.2.2 Western Blot检测 | 第37-38页 |
| 3.2.3 CPT1活性的检测 | 第38-39页 |
| 3.3.4 数据分析 | 第39页 |
| 3.3 试验结果 | 第39-43页 |
| 3.3.1 两种RCS对脂肪酸转运相关蛋白表达的影响 | 第39-40页 |
| 3.3.2 两种RCS对CPT1活性的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.3 GO对BRL 3A细胞ATP产生的抑制作用 | 第41-42页 |
| 3.3.4 GO与BRL 3A细胞IR | 第42-43页 |
| 3.3.5 两种RCS诱导 3T3-L1细胞IR | 第43页 |
| 3.4 讨论 | 第43-45页 |
| 3.5 小结 | 第45-46页 |
| 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-55页 |
| 致谢 | 第55-57页 |
| 作者简介 | 第57页 |
