| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 论文创新点摘要 | 第8-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-25页 |
| 1.1 研究背景及意义 | 第12页 |
| 1.2 国内外研究现状 | 第12-23页 |
| 1.2.1 石油污染的产生和危害 | 第12-14页 |
| 1.2.2 石油污染土壤的修复技术 | 第14-15页 |
| 1.2.3 烷烃的微生物降解 | 第15-16页 |
| 1.2.4 多环芳烃的微生物降解 | 第16-18页 |
| 1.2.5 含硫杂环芳烃的微生物降解 | 第18-23页 |
| 1.3 研究内容与技术路线 | 第23-25页 |
| 1.3.1 研究内容 | 第23-24页 |
| 1.3.2 技术路线 | 第24-25页 |
| 第二章 含硫杂环芳烃降解菌的筛选、鉴定及培养条件优化 | 第25-50页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-27页 |
| 2.1.1 主要实验仪器及试剂 | 第25-27页 |
| 2.1.2 培养基 | 第27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-30页 |
| 2.2.1 样品采集 | 第27页 |
| 2.2.2 二苯并噻吩降解菌的筛选与保藏 | 第27-28页 |
| 2.2.3 降解菌的生理生化实验 | 第28页 |
| 2.2.4 单菌株的分子鉴定 | 第28页 |
| 2.2.5 降解菌株的系统发育分析 | 第28页 |
| 2.2.6 二苯并噻吩降解菌的培养条件优化 | 第28-29页 |
| 2.2.7 气相色谱法测定DBT浓度 | 第29-30页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第30-48页 |
| 2.3.1 二苯并噻吩降解混合菌的富集筛选 | 第30页 |
| 2.3.2 二苯并噻吩降解单菌的分离纯化 | 第30-33页 |
| 2.3.3 降解菌株的分子鉴定及系统发育分析 | 第33-40页 |
| 2.3.4 单因素对DBT降解率的影响 | 第40-44页 |
| 2.3.5 响应曲面法优化降解菌的培养条件 | 第44-48页 |
| 2.4 本章小结 | 第48-50页 |
| 第三章 Pseudomonas sp. LKY-5 对二苯并噻吩的降解特性及代谢途径分析 | 第50-62页 |
| 3.1 实验材料 | 第50-52页 |
| 3.1.1 主要实验仪器及试剂 | 第50-51页 |
| 3.1.2 培养基 | 第51页 |
| 3.1.3 菌源 | 第51-52页 |
| 3.2 实验方法 | 第52-53页 |
| 3.2.1 LKY-5 的扫描电镜观察 | 第52页 |
| 3.2.2 不同初始DBT浓度下LKY-5 的降解特性考察 | 第52页 |
| 3.2.3 DBT降解率的计算 | 第52页 |
| 3.2.4 细胞干重的测定 | 第52页 |
| 3.2.5 GC-MS分析二苯并噻吩代谢产物 | 第52-53页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第53-61页 |
| 3.3.1 LKY-5 降解菌株的形态观察 | 第53-54页 |
| 3.3.2 不同初始DBT浓度下LKY-5 的降解特性 | 第54-55页 |
| 3.3.3 LKY-5 对DBT的代谢产物分析 | 第55-59页 |
| 3.3.4 LKY-5 对DBT的代谢途径研究 | 第59-61页 |
| 3.4 本章小结 | 第61-62页 |
| 第四章 降解底物宽泛性研究及柴油的降解特性分析 | 第62-76页 |
| 4.1 实验材料 | 第62-64页 |
| 4.1.1 主要实验仪器及试剂 | 第62-64页 |
| 4.1.2 培养基 | 第64页 |
| 4.1.3 菌源 | 第64页 |
| 4.1.4 柴油来源 | 第64页 |
| 4.2 实验方法 | 第64-67页 |
| 4.2.1 单一底物和双底物的降解研究 | 第64-65页 |
| 4.2.2 柴油降解率的计算 | 第65-66页 |
| 4.2.3 柴油中硫类型分析 | 第66页 |
| 4.2.4 柴油组分分析 | 第66-67页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第67-74页 |
| 4.3.1 单一底物的降解研究 | 第67页 |
| 4.3.2 双底物的降解研究 | 第67-69页 |
| 4.3.3 柴油中不同含硫化合物的降解研究 | 第69-71页 |
| 4.3.4 柴油中正构烷烃的降解研究 | 第71-74页 |
| 4.4 本章小结 | 第74-76页 |
| 第五章 Pseudomonas sp. LKY-5 产生的表面活性剂提取及其特性研究 | 第76-88页 |
| 5.1 实验材料 | 第76-78页 |
| 5.1.1 主要实验仪器及试剂 | 第76-78页 |
| 5.1.2 培养基 | 第78页 |
| 5.1.3 菌源 | 第78页 |
| 5.2 实验方法 | 第78-80页 |
| 5.2.1 碳源优化 | 第78页 |
| 5.2.2 生物表面活性剂的提取、分离及薄层色谱（TLC）分析 | 第78页 |
| 5.2.3 生物表面活性剂的鉴定 | 第78-79页 |
| 5.2.4 生物表面活性剂的理化性质分析 | 第79页 |
| 5.2.5 生物表面活性剂的稳定性研究 | 第79-80页 |
| 5.3 实验结果与讨论 | 第80-86页 |
| 5.3.1 碳源优化 | 第80页 |
| 5.3.2 生物表面活性剂的化学组分分析及鉴定 | 第80-82页 |
| 5.3.3 生物表面活性剂的理化性质分析 | 第82-84页 |
| 5.3.4 生物表面活性剂的稳定性研究 | 第84-86页 |
| 5.4 本章小结 | 第86-88页 |
| 第六章 Pseudomonas sp. LKY-5 在二苯并噻吩污染土壤修复中的应用 | 第88-98页 |
| 6.1 实验材料 | 第88-90页 |
| 6.1.1 主要实验仪器及试剂 | 第88-89页 |
| 6.1.2 培养基 | 第89页 |
| 6.1.3 菌源 | 第89-90页 |
| 6.2 实验方法 | 第90-92页 |
| 6.2.1 土样采集 | 第90页 |
| 6.2.2 土样理化性质测定 | 第90页 |
| 6.2.3 土样微生物数量测定 | 第90页 |
| 6.2.4 污染土壤生物修复 | 第90-91页 |
| 6.2.5 土样中DBT浓度测定 | 第91-92页 |
| 6.3 实验结果与讨论 | 第92-96页 |
| 6.3.1 土样基本性质分析 | 第92-93页 |
| 6.3.2 污染土壤生物修复 | 第93-96页 |
| 6.4 本章小结 | 第96-98页 |
| 第七章 结论与建议 | 第98-101页 |
| 7.1 结论 | 第98-100页 |
| 7.2 建议 | 第100-101页 |
| 参考文献 | 第101-118页 |
| 附录 | 第118-127页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第127-128页 |
| 致谢 | 第128-129页 |
| 作者简介 | 第129页 |
