摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-9页 |
第一章 绪论 | 第19-33页 |
1.1 多糖的氧化方法 | 第19-21页 |
1.1.1 C-2、3醇羟基的氧化 | 第19页 |
1.1.2 C-6醇羟基的氧化 | 第19-20页 |
1.1.3 酶催化氧化 | 第20-21页 |
1.2 氧化多糖在药物载体中的应用 | 第21-22页 |
1.2.1 水凝胶 | 第21页 |
1.2.2 微球/微胶囊 | 第21-22页 |
1.2.3 纳米颗粒 | 第22页 |
1.3 空心硬胶囊 | 第22-24页 |
1.3.1 空心硬胶囊的发展 | 第22-23页 |
1.3.2 明胶胶囊 | 第23-24页 |
1.3.3 羟丙基甲基纤维素胶囊 | 第24页 |
1.3.4 其他材料空心硬胶囊 | 第24页 |
1.4 纳米颗粒的制备方法及其作为抗癌药物载体的应用 | 第24-32页 |
1.4.1 两步法:纳米乳液的制备 | 第25-27页 |
1.4.1.1 高能乳化法 | 第25-26页 |
1.4.1.2 低能乳化法 | 第26-27页 |
1.4.2 两步法:纳米颗粒的形成 | 第27-29页 |
1.4.2.1 溶剂挥发法 | 第27页 |
1.4.2.2 溶剂扩散法 | 第27-28页 |
1.4.2.3 盐析法 | 第28页 |
1.4.2.4 乳化聚合法 | 第28页 |
1.4.2.5 界面缩聚法 | 第28-29页 |
1.4.3 一步法 | 第29页 |
1.4.3.1 纳米沉淀法 | 第29页 |
1.4.3.2 自组装法 | 第29页 |
1.4.4 纳米颗粒作为抗癌药物载体的应用 | 第29-32页 |
1.5 立题依据和目标 | 第32-33页 |
1.5.1 论文主要依据 | 第32页 |
1.5.2 论文工作目标 | 第32-33页 |
第二章 氧化魔芋的制备与表征 | 第33-41页 |
2.1 前言 | 第33页 |
2.2 材料与设备 | 第33-34页 |
2.2.1 实验材料 | 第33页 |
2.2.2 实验仪器 | 第33-34页 |
2.3 实验方法 | 第34-35页 |
2.3.1 氧化魔芋的制备 | 第34页 |
2.3.2 氧化魔芋多糖的傅立叶红外分析 | 第34-35页 |
2.3.3 氧化魔芋的分子量分析 | 第35页 |
2.3.4 氧化魔芋多糖的X射线衍射分析 | 第35页 |
2.3.5 氧化魔芋多糖的扫描电子显微镜分析 | 第35页 |
2.3.6 氧化魔芋多糖溶液的透明度分析 | 第35页 |
2.3.7 氧化魔芋多糖溶液的粘度分析 | 第35页 |
2.4 结果与讨论 | 第35-40页 |
2.4.1 氧化魔芋的傅立叶红外分析 | 第35-36页 |
2.4.2 氧化魔芋分子量的分析 | 第36-37页 |
2.4.3 氧化魔芋的X衍射分析 | 第37-38页 |
2.4.4 氧化魔芋多糖的扫描电子显微镜分析 | 第38页 |
2.4.5 氧化魔芋多糖溶液的粘度分析 | 第38-39页 |
2.4.6 氧化魔芋多糖溶液透明度分析 | 第39-40页 |
2.5 本章小结 | 第40-41页 |
第三章 氧化魔芋胶囊的制备与表征 | 第41-49页 |
3.1 前言 | 第41页 |
3.2 材料与设备 | 第41-42页 |
3.2.1 实验材料 | 第41-42页 |
3.2.2 实验仪器 | 第42页 |
3.3 实验方法 | 第42-44页 |
3.3.1 氧化魔芋胶囊的制备 | 第42页 |
3.3.2 魔芋、氧化魔芋膜的制备 | 第42页 |
3.3.3 魔芋、氧化魔芋膜的吸水率分析 | 第42-43页 |
3.3.4 魔芋、氧化魔芋膜的接触角分析 | 第43页 |
3.3.5 魔芋、氧化魔芋膜的透明度分析 | 第43页 |
3.3.6 魔芋、氧化魔芋膜的扫描电子显微镜分析 | 第43页 |
3.3.7 魔芋、氧化魔芋膜的力学性能分析 | 第43-44页 |
3.3.8 氧化魔芋胶囊的溶出度测定 | 第44页 |
3.4 结果与讨论 | 第44-48页 |
3.4.1 膜的吸水率分析 | 第44页 |
3.4.2 氧化魔芋膜的接触角分析 | 第44-45页 |
3.4.3 氧化魔芋膜的透明度分析 | 第45页 |
3.4.4 氧化魔芋膜的扫描电子显微镜分析 | 第45-46页 |
3.4.5 氧化魔芋膜的力学性能分析 | 第46-47页 |
3.4.6 氧化魔芋胶囊溶出度分析 | 第47-48页 |
3.5 本章小结 | 第48-49页 |
第四章 氧化多糖纳米球的制备及其稳定性研究 | 第49-63页 |
4.1 前言 | 第49页 |
4.2 材料与设备 | 第49-50页 |
4.2.1 实验材料 | 第49-50页 |
4.2.2 实验仪器 | 第50页 |
4.3 实验方法 | 第50-53页 |
4.3.1 氧化淀粉的制备 | 第50页 |
4.3.2 氧化多糖纳米球的制备 | 第50-51页 |
4.3.3 氧化多糖纳米球粒径的测量 | 第51页 |
4.3.4 氧化多糖纳米球SEM表征 | 第51页 |
4.3.5 氧化淀粉纳米球pH3条件下的稳定性研究 | 第51页 |
4.3.6 增强氧化淀粉纳米球pH3条件下稳定性 | 第51-52页 |
4.3.6.1 增加交联剂FeSO_4·7H_2O的浓度 | 第51-52页 |
4.3.6.2 增加氧化淀粉的浓度 | 第52页 |
4.3.6.3 纳米球吸附PLL | 第52页 |
4.3.7 增强氧化淀粉纳米球pH7条件下稳定性 | 第52-53页 |
4.3.8 纳米球在pH3条件下PLL,pH7条件下PLL、PEI的最佳吸附量 | 第53页 |
4.4 结果与讨论 | 第53-60页 |
4.4.1 氧化淀粉纳米球和氧化魔芋纳米球粒径比较 | 第53-54页 |
4.4.2 氧化淀粉纳米球的稳定性研究 | 第54-55页 |
4.4.3 增强氧化淀粉纳米球pH3条件下稳定性 | 第55-58页 |
4.4.4 增强氧化淀粉纳米球pH7条件下稳定性 | 第58-59页 |
4.4.5 纳米球最大吸附PLL、PEI量 | 第59-60页 |
4.5 本章小结 | 第60-63页 |
第五章 阿霉素包埋率的测定 | 第63-67页 |
5.1 前言 | 第63-64页 |
5.2 材料与设备 | 第64页 |
5.2.1 实验材料 | 第64页 |
5.2.2 实验仪器 | 第64页 |
5.3 实验方法 | 第64-65页 |
5.3.1 盐酸阿霉素标准曲线的绘制 | 第64页 |
5.3.2 盐酸阿霉素的添加量对包埋率的影响 | 第64页 |
5.3.3 PLL的添加量对盐酸阿霉素包埋率的影响 | 第64-65页 |
5.4 结果与讨论 | 第65-66页 |
5.5 本章小结 | 第66-67页 |
第六章 结论与展望 | 第67-69页 |
6.1 结论 | 第67-68页 |
6.2 创新点 | 第68页 |
6.3 展望 | 第68-69页 |
参考文献 | 第69-73页 |
附录 | 第73-77页 |
致谢 | 第77-79页 |
研究成果及发表的学术论文 | 第79-81页 |
作者及导师简介 | 第81-82页 |
附件 | 第82-83页 |