摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
缩略词表 | 第7-11页 |
第一部分 文献综述 | 第11-22页 |
第一章 活性氧与植物逆境 | 第11-15页 |
1 植物体内活性氧的产生 | 第11-12页 |
2 植物体内活性氧的清除 | 第12-15页 |
2.1 抗坏血酸和谷胱甘肽 | 第12-13页 |
2.2 超氧化物歧化酶(SOD) | 第13-14页 |
2.3 抗坏血酸过氧化物酶(APX) | 第14页 |
2.4 过氧化氢酶(CAT) | 第14-15页 |
第二章 谷氧还蛋白的研究进展 | 第15-20页 |
1 植物氧化还原系统 | 第15-16页 |
1.1 抗坏血酸-谷胱甘肽循环系统 | 第15页 |
1.2 硫氧还蛋白系统 | 第15页 |
1.3 谷氧还蛋白系统 | 第15-16页 |
2 谷氧还蛋白的分类 | 第16-17页 |
3 谷氧还蛋白的功能 | 第17-19页 |
3.1 CPYC型谷氧还蛋白(GRXs)的功能 | 第17-18页 |
3.2 CGFS型谷氧还蛋白(GRXs)的功能 | 第18页 |
3.3 CC型谷氧还蛋白(GRXs)的功能 | 第18-19页 |
4 水稻中谷氧还蛋白(GRXs)的研究 | 第19-20页 |
第三章 研究目的及意义 | 第20-22页 |
1 研究目的及意义 | 第20-21页 |
2 技术路线 | 第21-22页 |
第二部分 研究论文 | 第22-49页 |
第一章 氧化胁迫下OsGRX20在不同水稻品种中的表达模式 | 第22-31页 |
1 前言 | 第22页 |
2 实验材料与试剂 | 第22页 |
2.1 材料 | 第22页 |
2.2 试剂 | 第22页 |
3 实验方法 | 第22-26页 |
3.1 水稻培养 | 第22-23页 |
3.2 胁迫处理 | 第23页 |
3.3 幼苗生长指标的测定 | 第23页 |
3.4 水稻总RNA的提取 | 第23-24页 |
3.5 cDNA一链的合成 | 第24页 |
3.6 实时荧光定量PCR | 第24-26页 |
3.7 数据分析 | 第26页 |
4 结果分析 | 第26-30页 |
4.1 MV处理后不同水稻品种的表型差异 | 第26-27页 |
4.2 水稻RNA提取结果检测 | 第27-28页 |
4.3 不同水稻品种中OsGRX20对氧化和高温胁迫的应答反应 | 第28-30页 |
5 讨论 | 第30-31页 |
第二章 OsGRX20转基因水稻抗氧化功能分析 | 第31-40页 |
1 前言 | 第31页 |
2 材料与试剂 | 第31页 |
2.1 材料 | 第31页 |
2.2 试剂 | 第31页 |
3 实验方法 | 第31-34页 |
3.1 转基因水稻种子的筛选 | 第31页 |
3.2 转基因水稻的PCR验证 | 第31-32页 |
3.3 氧化胁迫处理 | 第32页 |
3.5 幼苗叶绿素含量的测定 | 第32页 |
3.6 超氧阴离子积累量的测定 | 第32-33页 |
3.7 抗氧化相关基因表达量分析 | 第33-34页 |
3.8 数据分析 | 第34页 |
4 结果分析 | 第34-38页 |
4.1 转基因水稻的表达验证 | 第34页 |
4.2 MV处理对转基因水稻生长特性的影响 | 第34-36页 |
4.3 MV处理后水稻叶片中O_2~(·-)积累量 | 第36-37页 |
4.4 MV处理后水稻叶片中抗氧化物酶相关基因的表达分析 | 第37-38页 |
5 讨论 | 第38-40页 |
第三章 OsGRX20亚细胞定位 | 第40-49页 |
1 前言 | 第40页 |
2 实验材料和试剂 | 第40-41页 |
2.1 菌株和载体 | 第40页 |
2.2 试剂和培养基 | 第40-41页 |
3 实验方法 | 第41-46页 |
3.1 35S::OsGRX20::GFP融合载体的构建 | 第41-46页 |
3.2 OsGRX20的亚细胞定位 | 第46页 |
4 实验结果 | 第46-48页 |
4.1 35S::OsGRX20::GFP载体的构建 | 第46-47页 |
4.2 OsGRX20蛋白的亚细胞定位 | 第47-48页 |
5. 讨论 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-56页 |
致谢 | 第56-58页 |