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毛蕊异黄酮对血管内皮细胞ICAM-1及其受体LFA-1表达的影响

中文摘要第1-5页
Abstract第5-7页
英文缩略词表第7-12页
第一章 前言第12-26页
 1 内皮细胞的生理功能第13-16页
   ·血管内皮细胞对血管紧张性的调节第14页
   ·内皮细胞对血液凝固的调节第14页
   ·血管内皮细胞在肾小球选择性滤过中的作用第14-15页
   ·内皮功能的调节第15-16页
 2 内皮功能紊乱促进慢性肾脏病进展第16-20页
   ·内皮源性舒张功能障碍第16页
   ·内皮细胞与炎症反应第16页
   ·ICAM-1与LFA-1的生物学作用与肾病进展第16-20页
 3 微血管内皮细胞与慢性肾脏病进展第20-22页
   ·微血管内皮丢失第20页
   ·微血管内皮丢失机制第20-22页
 4 黄芪黄酮化合物的药理作用第22-23页
   ·抗氧化作用第22页
   ·免疫调节作用第22页
   ·减轻血管内皮通透性增加作用第22页
   ·抗病毒作用第22-23页
   ·对细胞增殖的影响第23页
   ·清除毒性代谢产物作用第23页
   ·毒性作用第23页
 5 黄芪治疗肾脏疾病的药理研究进展第23-26页
   ·降低尿蛋白作用第24页
   ·调节免疫淋巴细胞作用第24页
     ·对T淋巴细胞作用第24页
     ·对白细胞介素-2(IL-2)及IL-2受体(IL-2R)的作用第24页
     ·对白细胞介素-6(IL-6)的作用第24页
     ·对单核巨噬细胞系统的影响第24页
   ·对水钠代谢的影响第24-25页
   ·对高凝状态的影响第25页
   ·治疗肾病的其他作用第25-26页
第二章 材料及方法第26-34页
 1 实验材料第26-29页
   ·细胞来源第26页
   ·培养基第26页
   ·试剂和试液第26页
   ·酶联免疫分析试剂盒第26-27页
   ·部分溶液及其配制第27-28页
     ·PBS(0.02M)的配制第27页
     ·PBS(0.01M)的配制第27页
     ·L-DMEM培养液的配制第27页
     ·胰蛋白酶(0.25%)的配制第27页
     ·PMN分离提取第27-28页
   ·实验仪器第28-29页
 2 实验方法第29-33页
   ·试剂配制第29页
     ·不同浓度毛蕊异黄酮溶液的配制第29页
     ·TNFα(40ng/ml)的配制第29页
   ·实验分组第29页
   ·ECV-304细胞的培养第29-30页
     ·培养第29-30页
     ·消化传代第30页
     ·冻存第30页
     ·复苏第30页
   ·酶联免疫吸附试验(ELISA)标本的留取及操作第30-33页
     ·ICAM-1检测第30-32页
       ·标准品的稀释与加样第31页
       ·加样第31页
       ·温育第31页
       ·配液第31页
       ·洗涤第31页
       ·加酶第31页
       ·温育第31页
       ·洗涤第31-32页
       ·显色第32页
       ·终止第32页
       ·测定第32页
     ·LFA-1检测第32-33页
       ·标准品的稀释与加样第32页
       ·加样第32-33页
       ·温育第33页
       ·配液第33页
       ·洗涤第33页
       ·加酶第33页
       ·温育第33页
       ·洗涤第33页
       ·显色第33页
       ·终止第33页
       ·测定第33页
 3 统计分析第33-34页
第三章 结果第34-36页
   ·毛蕊异黄酮对TNFα诱导ECV304细胞培养液中ICAM-1表达的影响第34-35页
   ·毛蕊异黄酮对TNFα诱导ECV304细胞培养液中LFA-1表达的影响第35-36页
第四章 讨论第36-40页
 1 ICAM-1的生物学特性第36页
 2 LFA-1的生物学特性第36页
 3 LFA-1与ICAM-1的协同刺激信号及结合能力的调节第36-37页
 4 ICAM-1与LFA-1的受体/配体效应促进CKD进展第37-40页
第五章 结论第40-41页
 1. 主要结论第40页
 2. 研究展望第40-41页
参考文献第41-45页
发表学术论文目录第45-46页
致谢第46页

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