| 摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 英文缩略词 | 第13-15页 |
| 上篇 文献综述 | 第15-41页 |
| 综述一 PC12拟缺血损伤模型的构建及机制研究 | 第15-28页 |
| 1. NGF诱导PC12细胞分化 | 第15-19页 |
| 1.1 NGF | 第15-17页 |
| 1.2 NGF诱导PC12细胞的细胞学变化 | 第17页 |
| 1.3 NGF诱导PC12细胞的生理机制 | 第17-18页 |
| 1.4 NGF诱导PC12细胞的相关研究 | 第18页 |
| 1.5 NGF诱导PC12细胞模型的评估 | 第18-19页 |
| 2. CoCl_2诱导PC12细胞凋亡 | 第19-20页 |
| 2.1 CoCl_2 | 第19页 |
| 2.2 CoCl_2诱导PC12细胞凋亡的分子机制 | 第19-20页 |
| 3. PC12细胞缺血缺氧后氧化应激损伤的机制 | 第20-23页 |
| 3.1 信号转导通路 | 第20-21页 |
| 3.2 转录因子 | 第21页 |
| 3.3 内源性气体信号分子 | 第21-23页 |
| 参考文献 | 第23-28页 |
| 综述二 缺血性脑卒中神经保护药的研究进展 | 第28-41页 |
| 1. 病理生理学基础 | 第28-29页 |
| 1.1 缺血性脑卒中 | 第28页 |
| 1.2 脑缺血半暗带 | 第28-29页 |
| 2. 神经保护作用 | 第29页 |
| 3. 神经保护药 | 第29-35页 |
| 3.1 钙拮抗剂 | 第29-30页 |
| 3.2 谷氮酸受体拮抗剂 | 第30页 |
| 3.3 γ-氨基丁酸 | 第30页 |
| 3.4 兴奋性氨基酸拮抗剂 | 第30-31页 |
| 3.5 抗氧化剂和自由基清除剂 | 第31-33页 |
| 3.6 亚低温疗法 | 第33页 |
| 3.7 细胞膜稳定剂 | 第33-34页 |
| 3.8 炎性反应抑制物 | 第34页 |
| 3.9 神经营养生长因子 | 第34页 |
| 3.10 胞二磷胆碱（CDPC） | 第34-35页 |
| 4. 中医中药治疗 | 第35-37页 |
| 参考文献 | 第37-41页 |
| 下篇 实验研究 | 第41-76页 |
| 前言 | 第41-44页 |
| 参考文献 | 第43-44页 |
| 实验流程框架图 | 第44-45页 |
| 实验一 川芎嗪衍生物TMP-CA对拟缺血损伤PC12细胞活性的影响 | 第45-54页 |
| 1. 实验材料 | 第45-46页 |
| 1.1 细胞株及生长条件 | 第45页 |
| 1.2 试剂与耗材 | 第45-46页 |
| 1.3 主要设备仪器 | 第46页 |
| 2. 实验方法 | 第46-50页 |
| 2.1 实验前准备 | 第46-47页 |
| 2.1.1 实验器皿准备 | 第46页 |
| 2.1.2 玻璃器皿清洗 | 第46-47页 |
| 2.2 实验试剂的配制 | 第47页 |
| 2.3 PC12细胞培养 | 第47-49页 |
| 2.4 缺血损伤的PC12细胞模型建立及化合物TMP-CA给药 | 第49-50页 |
| 2.5 MTT法测定细胞活性 | 第50页 |
| 3. 统计学处理 | 第50页 |
| 4. 结果 | 第50-51页 |
| 4.1 PC12细胞形态特征变化 | 第50-51页 |
| 4.2 化合物TMP-CA及不同浓度阳性药对分化后拟缺血损伤PC12活性的影响 | 第51页 |
| 5. 讨论 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-54页 |
| 实验二 川芎嗪衍生物TMP-CA对拟缺血损伤的PC12细胞凋亡的影响 | 第54-60页 |
| 1. 实验材料 | 第54页 |
| 1.1 细胞株及生长条件:PC12细胞,生长条件同实验 | 第54页 |
| 1.2 试剂与耗材 | 第54页 |
| 1.3 主要设备仪器 | 第54页 |
| 2. 实验方法 | 第54-56页 |
| 2.1 实验前准备 | 第54页 |
| 2.2 实验试剂的配制 | 第54-55页 |
| 2.3 PC12细胞培养 | 第55页 |
| 2.4 化合物TMP-CA对分化后拟缺血损伤PC12凋亡的影响 | 第55-56页 |
| 3. 结果 | 第56-58页 |
| 4. 讨论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-60页 |
| 实验三 川芎嗪衍生物TMP-CA对拟缺血损伤PC12细胞形态学影响及机理探讨 | 第60-70页 |
| 一、川芎嗪衍生物TMP-CA对拟缺血损伤PC12细胞形态学影响 | 第60-63页 |
| 1. 实验材料 | 第60-61页 |
| 1.1 细胞株及生长条件:PC12细胞,生长条件同实验一 | 第60页 |
| 1.2 试剂与耗材 | 第60-61页 |
| 1.3 主要设备仪器 | 第61页 |
| 2. 实验方法 | 第61-62页 |
| 2.1 实验前准备 | 第61页 |
| 2.2 实验试剂的配制 | 第61页 |
| 2.3 PC12细胞培养 | 第61页 |
| 2.4 细胞爬片密度的确定 | 第61页 |
| 2.5 拟缺血损伤PC12模型制备及细胞爬片 | 第61-62页 |
| 2.6 HE染色 | 第62页 |
| 3. 结果 | 第62-63页 |
| 4. 经验总结 | 第63页 |
| 二. 川芎嗪衍生物TMP-CA对拟缺血损伤PC12细胞Bcl-xl与Bad的影响 | 第63-69页 |
| 1. 实验材料 | 第63-64页 |
| 1.1 细胞株及生长条件:PC12细胞,生长条件同实验一 | 第63页 |
| 1.2 试剂与耗材 | 第63-64页 |
| 1.3 主要设备仪器 | 第64页 |
| 2. 实验方法 | 第64-65页 |
| 2.1 实验前准备 | 第64页 |
| 2.2 实验试剂的配制 | 第64页 |
| 2.3 PC12细胞培养 | 第64页 |
| 2.4 细胞爬片密度的确定 | 第64页 |
| 2.5 拟缺血损伤PC12模型制备及细胞爬片 | 第64页 |
| 2.6 免疫细胞化学 | 第64-65页 |
| 2.7 结果判读 | 第65页 |
| 3. 结果 | 第65-66页 |
| 3.1 化合物TMP-CA对分化后拟缺血损伤的PC12细胞Bad蛋白表达的影响 | 第65-66页 |
| 3.2 TMP-CA对分化后拟缺血损伤PC12 Bcl-xl蛋白表达影响 | 第66页 |
| 4. 经验总结 | 第66-67页 |
| 5. 讨论 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-70页 |
| 实验四 川芎嗪衍生物TMP-CA对拟缺血损伤PC12 NF-κ B/P65、Caspase-8蛋白表达的影响 | 第70-76页 |
| 1. 实验材料 | 第70-71页 |
| 1.1 细胞株及生长条件:PC12细胞,生长条件同实验一 | 第70页 |
| 1.2 试剂与耗材 | 第70-71页 |
| 1.3 主要设备仪器 | 第71页 |
| 2. 实验方法 | 第71-72页 |
| 2.1 实验前准备 | 第71页 |
| 2.2 实验试剂的配制 | 第71页 |
| 2.3 PC12细胞培养 | 第71页 |
| 2.4 拟缺血损伤的PC12细胞模型的制备及蛋白提取 | 第71-72页 |
| 2.5 Western blot实验 | 第72页 |
| 3. 结果 | 第72-73页 |
| 3.1 TMP-CA对分化后拟缺血损伤的PC12 NF-κB/P65、Caspase-8表达的影响 | 第72-73页 |
| 4. 讨论 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-76页 |
| 结语 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 在学期间主要研究成果 | 第78-80页 |
| 个人简历 | 第80页 |
