| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-23页 |
| 1 黑素皮质素受体 | 第11-12页 |
| 2 鱼类MCR基因 | 第12-16页 |
| ·鱼类MCR基因的克隆 | 第12-14页 |
| ·鱼类MCR的分子特征 | 第14页 |
| ·鱼类MCR的组织分布特征 | 第14-16页 |
| 3 鱼类MCR的药理学特性及介导的生物学功能 | 第16-21页 |
| ·鱼类MCR的药理学特性 | 第16-17页 |
| ·鱼类MCR介导的生物学功能 | 第17-21页 |
| 4 捕捞胁迫对水产养殖动物的影响简述 | 第21-22页 |
| 5 本论文研究的目的与意义 | 第22-23页 |
| 第二章 团头鲂MC2R和MC5R的克隆与序列分析 | 第23-43页 |
| 1 材料 | 第23-24页 |
| ·实验鱼 | 第23页 |
| ·实验试剂 | 第23页 |
| ·实验仪器 | 第23-24页 |
| 2 方法 | 第24-29页 |
| ·总RNA的提取 | 第24页 |
| ·cDNA第一链的获得 | 第24页 |
| ·引物的设计合成与序列片段的测定 | 第24-25页 |
| ·RACE扩增获得MC2R和MC5R mRNA序列 | 第25-28页 |
| ·团头鲂MC2R和MC5R基因的生物信息学分析 | 第28-29页 |
| 3 结果 | 第29-40页 |
| ·团头鲂MC2R和MC5R mRNA序列 | 第29-32页 |
| ·团头鲂MC2R和MC5R的同源性和进化分析 | 第32-36页 |
| ·团头鲂MC2R和MC5R的跨膜结构及特征 | 第36-40页 |
| 4 讨论 | 第40-41页 |
| 5 小结 | 第41-43页 |
| 第三章 团头鲂MC2R和MC5R的组织分布 | 第43-51页 |
| 1 材料 | 第43-44页 |
| ·实验鱼 | 第43页 |
| ·实验试剂 | 第43页 |
| ·实验仪器 | 第43-44页 |
| 2 方法 | 第44-46页 |
| ·组织样品的准备与总RNA提取 | 第44页 |
| ·引物的设计与合成 | 第44-45页 |
| ·双内参实时荧光定量PCR | 第45页 |
| ·质粒DNA及标准曲线的构建 | 第45-46页 |
| ·数据处理 | 第46页 |
| 3 结果 | 第46-48页 |
| ·荧光定量标曲信息 | 第46页 |
| ·团头鲂MC2R的组织分布特征 | 第46-47页 |
| ·团头鲂MC5R的组织分布特征 | 第47-48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 5 小结 | 第50-51页 |
| 第四章 捕捞胁迫后团头鲂MC2R和MC5R的表达 | 第51-59页 |
| 1 材料 | 第52页 |
| ·实验鱼 | 第52页 |
| ·实验试剂 | 第52页 |
| ·实验仪器 | 第52页 |
| 2 方法 | 第52-53页 |
| ·组织样品的准备与总RNA提取 | 第52页 |
| ·引物的设计与合成 | 第52-53页 |
| ·双内参实时荧光定量PCR | 第53页 |
| ·质粒DNA及标准曲线的构建 | 第53页 |
| ·血清的制备及血清皮质醇的测定 | 第53页 |
| ·数据处理 | 第53页 |
| 3 结果 | 第53-56页 |
| ·捕捞胁迫恢复阶段团头鲂血清皮质醇的变化 | 第53-54页 |
| ·捕捞胁迫恢复阶段团头鲂MC2R的表达调控 | 第54-55页 |
| ·捕捞胁迫恢复阶段团头鲂MC5R的表达调控 | 第55-56页 |
| 4 讨论 | 第56-57页 |
| ·MC2R在捕捞胁迫恢复期的调控作用 | 第56-57页 |
| ·MC5R在捕捞胁迫恢复期的调控作用 | 第57页 |
| 5 小结 | 第57-59页 |
| 第五章 MC5R的配体结合试验 | 第59-63页 |
| 1 材料 | 第59页 |
| ·实验试剂 | 第59页 |
| ·实验仪器 | 第59页 |
| 2 方法 | 第59-60页 |
| ·细胞转染 | 第59页 |
| ·放射性配体竞争性结合研究 | 第59-60页 |
| ·胞内cAMP测定 | 第60页 |
| 3 结果 | 第60-62页 |
| ·团头鲂MC5R与配体的结合能力 | 第60-62页 |
| ·团头鲂MC5R的cAMP活性 | 第62页 |
| 4 讨论 | 第62-63页 |
| 全文结论 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-75页 |
| 致谢 | 第75-77页 |
| 攻读硕士学位期间参与的学术会议及发表的论文 | 第77页 |