中文摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-11页 |
目录 | 第11-18页 |
第一章 固体脂质纳米粒研究概况及异甘草素的生物活性 | 第18-26页 |
1 固体脂质纳米粒研究概况 | 第18-21页 |
·固体脂质纳米粒简介 | 第18页 |
·SLN常用的制备材料 | 第18页 |
·SLN的制备方法 | 第18-19页 |
·SLN的载药方式 | 第19页 |
·SLN的给药途径 | 第19页 |
·SLN给药系统的优点 | 第19-20页 |
·SLN的应用 | 第20页 |
·SLN应用中存在的问题 | 第20-21页 |
·结构修饰对SLN的影响及应用 | 第21页 |
2 异甘草素及其生物活性 | 第21-22页 |
·异甘草素的结构及理化性质 | 第21页 |
·在植物中的分布及来源 | 第21-22页 |
·异甘草素广泛的生物活性 | 第22页 |
·异甘草素的抗肿瘤活性研究 | 第22页 |
3 本论文研究的意义 | 第22-24页 |
参考文献 | 第24-26页 |
第二章 异甘草素大鼠在体胃和肠吸收的研究 | 第26-46页 |
1 仪器与材料 | 第26-27页 |
·仪器和试剂 | 第26-27页 |
·实验动物 | 第27页 |
2 ISL药物浓度分析的方法学 | 第27-35页 |
·HPLC色谱条件 | 第27页 |
·溶液的配制 | 第27-28页 |
·方法专属性 | 第28-31页 |
·标准曲线的绘制及线性 | 第31-32页 |
·回收率试验 | 第32-33页 |
·精密度实验 | 第33页 |
·ISL及酚红在空白肠循环液中的稳定性 | 第33-35页 |
·ISL的溶解度问题 | 第35页 |
3 动物实验 | 第35-36页 |
·大鼠在体肠循环实验 | 第35-36页 |
·肠循环液的处理及ISL和酚红的含量测定 | 第36页 |
4 数据处理方法 | 第36-38页 |
5 影响肠吸收结果的因素 | 第38-39页 |
·环境温度的影响 | 第38页 |
·肠循环液pH值的影响 | 第38-39页 |
6 实验结果 | 第39-43页 |
·同一肠段药物浓度与吸收的关系 | 第39页 |
·肠段与ISL吸收的关系 | 第39-43页 |
7 讨论 | 第43-44页 |
·水的影响 | 第43页 |
·不同肠段与ISL吸收的关系 | 第43页 |
·ISL浓度与吸收的关系及吸收机制 | 第43页 |
·胆汁的排泄情况 | 第43页 |
·肠吸收试验结果与ISL口服药物动力学的关系 | 第43-44页 |
8 小结 | 第44-45页 |
参考文献 | 第45-46页 |
第三章 异甘草素固体脂质纳米粒的制备及质量评价 | 第46-68页 |
1 仪器与试剂 | 第46-47页 |
·实验材料 | 第46页 |
·实验仪器 | 第46-47页 |
2 实验方法 | 第47-56页 |
·包封率和载药量的测定 | 第47-50页 |
·ISL-SLN的制备方法 | 第50页 |
·ISL-SLN的质量评价 | 第50页 |
·ISL-SLN处方材料及制备工艺的初步筛选 | 第50-53页 |
·处方材料用量的初步筛选 | 第53-56页 |
3 均匀设计优化ISL-SLN的处方 | 第56-58页 |
4 实验结果 | 第58-59页 |
·ISL-SLN的形态学观察 | 第58页 |
·ISL-SLN的粒径及其分布 | 第58-59页 |
·ISL-SLN的Zeta电位测定 | 第59页 |
·ISL-SLN包封率和载药量的测定 | 第59页 |
5 ISL-SLN的体外释放度试验 | 第59-62页 |
·实验方法学 | 第59-61页 |
·ISL-SLN体外释放度试验 | 第61-62页 |
6 ISL-SLN的稳定性试验 | 第62-63页 |
7 ISL-SLN冻干工艺的研究 | 第63-65页 |
·支架材料的选择 | 第64页 |
·支架材料的加入 | 第64页 |
·冻干工艺的建立 | 第64页 |
·支架剂用量的确定 | 第64-65页 |
8 ISL-SLN冻干制剂的质量评价 | 第65-66页 |
·外观 | 第65页 |
·形态观察 | 第65页 |
·再分散性 | 第65页 |
·粒径及Zeta电位 | 第65页 |
·包封率和载药量测定 | 第65页 |
·ISL-SLN冻干制剂的稳定性考察 | 第65-66页 |
9 结论 | 第66-67页 |
参考文献 | 第67-68页 |
第四章 低分子肝素对ISL-SLN的修饰 | 第68-80页 |
1 仪器与试剂 | 第68-69页 |
·试剂 | 第68页 |
·仪器 | 第68-69页 |
2 LMWH的测定方法的建立 | 第69-74页 |
·吸收波长的选择 | 第69-70页 |
·pH值的选择 | 第70-71页 |
·天青A用量 | 第71页 |
·反应时间对吸收值的影响 | 第71-72页 |
·纳米粒原材料对测定的影响 | 第72-73页 |
·LMWH标准溶液的配制 | 第73页 |
·天青A溶液的配制 | 第73页 |
·标准曲线及线性 | 第73页 |
·回收率与重现性 | 第73-74页 |
3 包封率的测定 | 第74-75页 |
·纳米粒中LMWH的总量测定 | 第74页 |
·游离LMWH的测定 | 第74页 |
·包封率的计算 | 第74-75页 |
·超滤离心管对低分子量肝素钠的通透性研究 | 第75页 |
4 LMWH-ISL-SLN的制备方法 | 第75页 |
5 均匀设计法优化LMWH修饰的SLN的处方 | 第75-76页 |
6 实验结果 | 第76-78页 |
·LMWH-ISL-SLN的形态学观察 | 第76-77页 |
·LMWH-ISL-SLN的粒径及其分布 | 第77页 |
·LMWH-ISL-SLN Zeta的电位测定 | 第77-78页 |
·LMWH-ISL-SLN的包封率和载药量 | 第78页 |
·稳定性试验 | 第78页 |
·LMWH修饰对ISL-SLN的影响 | 第78页 |
7 结论 | 第78-79页 |
参考文献 | 第79-80页 |
第五章 ISL-SLN、LMWH-ISL-SLN在小鼠体内的分布及药动学 | 第80-113页 |
1 仪器与材料 | 第80页 |
·仪器和试剂 | 第80页 |
·实验动物 | 第80页 |
2 实验方法 | 第80-93页 |
·ISL标准系列溶液及乙酰苯胺内标溶液的配制 | 第81页 |
·血桨样品的处理方法 | 第81页 |
·各组织器官样品的处理 | 第81页 |
·血浆及组织器官中ISL分析的色谱条件 | 第81-82页 |
·分析方法的专属性 | 第82-87页 |
·标准曲线的绘制 | 第87-92页 |
·精密度实验 | 第92页 |
·方法回收率 | 第92-93页 |
·稳定性试验 | 第93页 |
3 ISL、ISL-SLN、LMWH-ISL-SLN在小鼠体内的组织分布研究 | 第93-109页 |
·动物实验设计 | 第93-94页 |
·小鼠血浆药物浓度-时间数据 | 第94-96页 |
·小鼠血浆组织的药动学参数 | 第96-97页 |
·小鼠各组织的药物浓度-时间数据 | 第97-105页 |
·不同剂型及剂量的药物在组织中的药动学参数 | 第105-108页 |
·小鼠体内的靶向性评价 | 第108-109页 |
4 讨论 | 第109-112页 |
参考文献 | 第112-113页 |
第六章 ISL、ISL-SLN、LMWH-ISL-SLN对人肝癌细胞HepG2体外增殖的抑制作用 | 第113-123页 |
1 实验仪器与材料 | 第113-114页 |
2 溶液的配制 | 第114-115页 |
·DMEM培养基的配制 | 第114页 |
·RPMI1640培养基的配制 | 第114页 |
·D-Hanks溶液的配制 | 第114页 |
·胰蛋白酶的配制 | 第114页 |
·PBS缓冲液的配制 | 第114页 |
·0.5%噻唑蓝(MTT)溶液的配制 | 第114-115页 |
3 实验方法学 | 第115-116页 |
·HepG2细胞株的复苏 | 第115页 |
·HepG2细胞株的培养与传代 | 第115页 |
·MTT法测定药物对HepG2肿瘤细胞的作用 | 第115-116页 |
·Annexin V-FITC/PI双染 | 第116页 |
4 结果 | 第116-121页 |
·ISL溶液对HePG2细胞体外增殖的抑制作用 | 第116-117页 |
·双染结果 | 第117-121页 |
5 结论 | 第121-122页 |
参考文献 | 第122-123页 |
第七章 ISL-SLN及LMWH-ISL-SLN的急性毒性及血液毒性 | 第123-129页 |
1 仪器与材料 | 第123-124页 |
·试剂和材料 | 第123-124页 |
·主要仪器设备 | 第124页 |
·实验动物 | 第124页 |
2 ISL-SLN及LMWH-ISL-SLN的急性毒性 | 第124-126页 |
·实验方法 | 第124-125页 |
·实验结果 | 第125-126页 |
3 对凝血系统的影响 | 第126-127页 |
·动物实验 | 第126页 |
·实验结果 | 第126-127页 |
4 讨论 | 第127-128页 |
参考文献 | 第128-129页 |
在学期间的研究成果 | 第129-130页 |
致谢 | 第130页 |