| 摘要 | 第1-12页 |
| Abstract | 第12-20页 |
| 第一章 前言 | 第20-36页 |
| 1 炎症 | 第20-26页 |
| ·炎症的致癌机理 | 第20-21页 |
| ·炎症和癌症中常见的分子介质 | 第21-26页 |
| ·核因子-κB （NF-κB） | 第21-22页 |
| ·活性氧和活性氮（RONS） | 第22-23页 |
| ·一氧化氮（NO）和 p53 | 第23-24页 |
| ·炎性细胞因子和趋化因子 | 第24-25页 |
| ·前列腺素通路分子 | 第25页 |
| ·其他炎症和癌症调节因子 | 第25-26页 |
| 2 多甲氧基黄酮（Polymethoxyflavones, PMFs）和羟基化多甲氧基黄酮（Hydroxylated PMFs）的生物和化学特性 | 第26-36页 |
| ·羟基化多甲氧基黄酮的分离与合成 | 第27-28页 |
| ·多甲氧基黄酮的生物活性 | 第28-32页 |
| ·多甲氧基黄酮的抗炎活性 | 第28-29页 |
| ·多甲氧基黄酮的抗癌活性 | 第29-31页 |
| ·多甲氧基黄酮的抗动脉粥样硬化活性 | 第31-32页 |
| ·多甲氧基黄酮的代谢研究 | 第32-33页 |
| ·多甲氧基黄酮的生物利用度 | 第33-36页 |
| 第二章 川陈皮素和莱菔硫烷对脂多糖诱导的 RAW 264.7 细胞的协同抗炎作用 | 第36-63页 |
| 0 前言 | 第36-37页 |
| 1 材料和试剂 | 第37-40页 |
| ·材料来源 | 第37页 |
| ·主要试剂 | 第37-40页 |
| ·主要仪器 | 第40页 |
| 2 试验方法 | 第40-47页 |
| ·细胞培养 | 第40页 |
| ·细胞生存能力检测 | 第40-41页 |
| ·一氧化氮（NO）含量检测 | 第41-42页 |
| ·药物协同效应分析 | 第42页 |
| ·ELISA 法检测 TNF-α和 IL-1 含量 | 第42-43页 |
| ·细胞总蛋白的提取 | 第43-44页 |
| ·蛋白浓度的测定 | 第44页 |
| ·免疫印迹法（Western Blot）检测 | 第44-45页 |
| ·实时荧光定量反转录 PCR（qRT-PCR）检测 | 第45-47页 |
| 3 实验结果 | 第47-60页 |
| ·川陈皮素和莱菔硫烷结合用药对 LPS 诱导 RAW 264.7 细胞产生 NO 的协同抑制作用 | 第47-52页 |
| ·川陈皮素和莱菔硫烷结合用药对 iNOS 和 COX-2 蛋白表达的抑制作用 | 第52-55页 |
| ·川陈皮素和莱菔硫烷结合用药对 IL-1 基因表达的抑制作用 | 第55-57页 |
| ·川陈皮素和莱菔硫烷结合用药对 HO-1 基因表达的诱导作用 | 第57-60页 |
| 4 讨论 | 第60-63页 |
| 第三章 5-去甲基川陈皮素及其体内代谢物对脂多糖诱导的 RAW 264.7 细胞的抗炎作用 | 第63-82页 |
| 0 前言 | 第63-64页 |
| 1 材料和试剂 | 第64-67页 |
| ·材料来源 | 第64-65页 |
| ·主要试剂 | 第65-67页 |
| ·主要仪器 | 第67页 |
| 2 试验方法 | 第67-69页 |
| ·细胞培养 | 第67页 |
| ·细胞生存能力检测 | 第67-68页 |
| ·一氧化氮（NO）含量检测 | 第68页 |
| ·ELISA 法检测 PGE2 和 IL-1 含量 | 第68页 |
| ·细胞总蛋白的提取 | 第68页 |
| ·蛋白浓度的测定 | 第68页 |
| ·免疫印迹法（Western Blot）检测 | 第68页 |
| ·实时荧光定量反转录 PCR（qRT-PCR）检测 | 第68-69页 |
| 3 实验结果 | 第69-79页 |
| ·5HPMF 及其代谢物 I、II、III 对 LPS 诱导 RAW 264.7 细胞产生的 NO 和 PGE2 的抑制作用 | 第69-73页 |
| ·5HPMF 及其代谢物 II、III 对 iNOS 和 COX-2 基因表达的抑制作用 | 第73-75页 |
| ·5HPMF 及其代谢物 II、III 对 IL-1 基因表达的抑制作用 | 第75-77页 |
| ·5HPMF 及其代谢物 I、III 对 HO-1 基因表达的诱导作用 | 第77-79页 |
| 4 讨论 | 第79-82页 |
| 第四章 橘皮素及其体内代谢物 4'-去甲基橘皮素对脂多糖诱导的 RAW 264.7细胞的抗炎作用 | 第82-106页 |
| 0 前言 | 第82-83页 |
| 1 材料和试剂 | 第83-86页 |
| ·材料来源 | 第83页 |
| ·主要试剂 | 第83-86页 |
| ·主要仪器 | 第86页 |
| 2 试验方法 | 第86-90页 |
| ·4'-去甲基橘皮素（4'-OH-TMF）的合成和鉴定 | 第86-87页 |
| ·细胞培养 | 第87页 |
| ·细胞生存能力检测 | 第87页 |
| ·一氧化氮（NO）含量检测 | 第87-88页 |
| ·ELISA 法检测 PGE2 和 IL-1 含量 | 第88页 |
| ·细胞总蛋白、核蛋白和细胞质蛋白的提取 | 第88-89页 |
| ·蛋白浓度的测定 | 第89页 |
| ·免疫印迹法（Western Blot）检测 | 第89页 |
| ·实时荧光定量反转录 PCR（qRT-PCR）检测 | 第89-90页 |
| 3 实验结果 | 第90-102页 |
| ·HPLC 分析鉴定橘皮素在小鼠尿样中的主要代谢物为 4'-去甲基橘皮素 | 第90-91页 |
| ·橘皮素和 4'-去甲基橘皮素对 LPS 诱导 RAW 264.7 细胞产生的 NO 和 PGE2 的抑制作用 | 第91-94页 |
| ·橘皮素和 4'-去甲基橘皮素对 iNOS 和 COX-2 基因表达的抑制作用 | 第94-97页 |
| ·橘皮素和 4'-去甲基橘皮素对 IκB-α降解和 NF-κB 核移位的抑制作用 | 第97-98页 |
| ·橘皮素和 4'-去甲基橘皮素对 MAPKs 和 PI3K/Akt 信号传导通路活化的抑制作用 | 第98-100页 |
| ·橘皮素和 4'-去甲基橘皮素对 IL-1 基因表达的抑制作用 | 第100-102页 |
| 4 讨论 | 第102-106页 |
| 第五章 5-去甲基橘皮素（5HTMF）及其体内代谢物 5, 4'-去二甲基橘皮素（Xanthomicrol）对脂多糖诱导的 RAW 264.7 细胞的抗炎作用 | 第106-127页 |
| 0 前言 | 第106-107页 |
| 1 材料和试剂 | 第107-110页 |
| ·材料来源 | 第107页 |
| ·主要试剂 | 第107-110页 |
| ·主要仪器 | 第110页 |
| 2 试验方法 | 第110-113页 |
| ·5HTMF 和 Xanthomicrol 的合成及鉴定 | 第110-111页 |
| ·细胞培养 | 第111-112页 |
| ·细胞生存能力检测 | 第112页 |
| ·一氧化氮（NO）含量检测 | 第112页 |
| ·ELISA 法检测 PGE2 和 IL-1 含量 | 第112页 |
| ·细胞总蛋白的提取 | 第112页 |
| ·蛋白浓度的测定 | 第112页 |
| ·免疫印迹法（Western Blot）检测 | 第112页 |
| ·实时荧光定量反转录 PCR（qRT-PCR）检测 | 第112-113页 |
| 3 实验结果 | 第113-124页 |
| ·HPLC 分析鉴定 5HTMF 在小鼠尿样中的主要代谢物为 Xanthomicrol | 第113-114页 |
| ·Xanthomicrol 对 LPS 诱导 RAW 264.7 细胞产生的 NO 和 PGE2 的抑制作用 | 第114-118页 |
| ·Xanthomicrol 对 iNOS 和 COX-2 表达的抑制作用 | 第118-120页 |
| ·Xanthomicrol 对 IL-1 基因表达的抑制作用 | 第120-122页 |
| ·Xanthomicrol 对 HO-1 基因表达的诱导作用 | 第122-124页 |
| 4 讨论 | 第124-127页 |
| 第六章 结论与创新点 | 第127-130页 |
| 1 总结与讨论 | 第127-129页 |
| 2 论文的主要结论 | 第129页 |
| 3 本研究的创新点 | 第129-130页 |
| 参考文献 | 第130-146页 |
| 致谢 | 第146-147页 |
