| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 1 绪论 | 第9-20页 |
| ·活性肽研究进展 | 第9-11页 |
| ·抗菌肽的分类 | 第9页 |
| ·抗菌肽的结构 | 第9-10页 |
| ·抗菌肽的作用机制 | 第10-11页 |
| ·两栖类动物活性肽研究进展 | 第11-14页 |
| ·两栖类动物活性肽的种类 | 第12页 |
| ·两栖类动物活性肽的结构特点 | 第12-14页 |
| ·两栖类动物活性肽的作用机理与功能 | 第14页 |
| ·活性肽抗肿瘤研究进展 | 第14-16页 |
| ·活性肽抗肿瘤活性 | 第14-15页 |
| ·两栖类活性肽抗肿瘤机理 | 第15-16页 |
| ·两栖类蛙皮活性肽抗肿瘤活性研究 | 第16-18页 |
| ·HPLC分离多肽原理及实验设计 | 第16页 |
| ·病毒与肿瘤细胞的关系 | 第16-17页 |
| ·SAH水解酶为靶位点的抗病毒药物筛选方法 | 第17页 |
| ·膜片钳技术的应用 | 第17-18页 |
| ·课题设计 | 第18-20页 |
| ·立题依据 | 第18页 |
| ·研究内容和技术路线 | 第18页 |
| ·预期目标 | 第18-20页 |
| 2 东北林蛙皮肤活性肽的提取及分离纯化 | 第20-25页 |
| ·实验材料和仪器 | 第20页 |
| ·实验动物 | 第20页 |
| ·实验材料 | 第20页 |
| ·实验仪器 | 第20页 |
| ·实验方法 | 第20-22页 |
| ·东北林蛙皮肤活性肽的粗提取物 | 第20页 |
| ·东北林蛙皮肤活性肽HPLC分离纯化 | 第20-22页 |
| ·测定分离产物的浓度 | 第22页 |
| ·结果与分析 | 第22-24页 |
| ·HPLC纯化东北林蛙皮肤活性肽组分 | 第22-24页 |
| ·测定分离产物的浓度结果 | 第24页 |
| ·讨论 | 第24-25页 |
| 3 东北林蛙皮肤活性肽HPLC纯化产物筛选 | 第25-36页 |
| ·HPLC纯化产物抗病毒组分筛选 | 第25-27页 |
| ·材料和试剂 | 第25页 |
| ·仪器 | 第25页 |
| ·SAH水解酶的粗提及纯度鉴定 | 第25页 |
| ·通过L-高半胱氨酸浓度变化测定SAH水解酶的活性 | 第25-26页 |
| ·HPLC纯化活性肽对SAH水解酶活性的抑制作用 | 第26-27页 |
| ·SAH水解酶筛选活性肽抑制肿瘤作用 | 第27-30页 |
| ·材料和试剂 | 第27页 |
| ·仪器 | 第27页 |
| ·PC-3细胞培养 | 第27-29页 |
| ·MTT法检测筛选活性肽抑制肿瘤作用 | 第29-30页 |
| ·结果与分析 | 第30-34页 |
| ·SAH水解酶的粗提物及纯度鉴定 | 第30页 |
| ·SAH水解酶的活性检测 | 第30-31页 |
| ·HPLC纯化活性肽对SAH水解酶活性的抑制曲线 | 第31-32页 |
| ·SAH水解酶筛选活性肽的抗肿瘤特性分析 | 第32-34页 |
| ·讨论 | 第34-36页 |
| 4 东北林蛙皮肤活性肽筛选组分抗肿瘤活性研究 | 第36-45页 |
| ·实验材料和仪器 | 第36页 |
| ·材料和试剂 | 第36页 |
| ·仪器 | 第36页 |
| ·实验方法 | 第36-39页 |
| ·筛选活性肽对Vero细胞延迟整流钾电流(I_K)的影响 | 第36-39页 |
| ·筛选活性肽对PC-3细胞延迟整流钾电流(I_K)的影响 | 第39页 |
| ·结果与分析 | 第39-43页 |
| ·筛选活性肽对Vero细胞延迟整流钾电流(I_K)影响的结果分析 | 第39-41页 |
| ·筛选活性肽对PC-3细胞延迟整流钾电流(I_K)影响的结果分析 | 第41-43页 |
| ·讨论 | 第43-45页 |
| 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-52页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
