| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-17页 |
| 1-1 细菌群体感应系统和群体感应信号分子AHLs | 第10-11页 |
| 1-1-1 细菌群体感应 | 第10页 |
| 1-1-2 革兰氏阴性菌信号分子AHLs | 第10页 |
| 1-1-3 AHLs 参与植物生长发育与抗病抗逆反应 | 第10-11页 |
| 1-2 植物细胞内游离Ca~(2+)参与调控植物生长发育及抗病抗逆反应 | 第11-13页 |
| 1-2-1 钙离子在植物细胞中的分布 | 第11页 |
| 1-2-2 植物细胞中的钙离子通道 | 第11页 |
| 1-2-3 钙离子结合蛋白钙调素(CaM) | 第11页 |
| 1-2-4 植物细胞中的钙信号 | 第11-12页 |
| 1-2-5 钙信号系统在植物生长发育及抗病抗逆中的作用 | 第12-13页 |
| 1-3 重组水母发光蛋白在植物细胞Ca~(2+)信号检测中的应用 | 第13-15页 |
| 1-3-1 植物细胞胞内Ca~(2+)检测方法 | 第13-14页 |
| 1-3-2 重组水母发光蛋白法的原理 | 第14页 |
| 1-3-3 重组水母发光蛋白法的优缺点 | 第14-15页 |
| 1-4 膜片钳技术 | 第15页 |
| 1-5 课题研究的目的和意义 | 第15-17页 |
| 第二章 拟南芥根细胞胞内钙信号的检测 | 第17-31页 |
| 2-1 材料 | 第17-19页 |
| 2-1-1 供试植物 | 第17页 |
| 2-1-2 试剂 | 第17-18页 |
| 2-1-3 MS 培养基 | 第18页 |
| 2-1-4 植物营养液 | 第18-19页 |
| 2-1-5 仪器设备 | 第19页 |
| 2-2 方法 | 第19-21页 |
| 2-2-1 拟南芥幼苗培养 | 第19页 |
| 2-2-2 荧光辅基的孵育 | 第19页 |
| 2-2-3 荧光强度的检测 | 第19-20页 |
| 2-2-4 冷光仪检测程序设置 | 第20页 |
| 2-2-5 发光值与钙离子浓度间的换算 | 第20-21页 |
| 2-3 结果 | 第21-29页 |
| 2-3-1 AHLs 诱导拟南芥幼苗根细胞胞内钙离子浓度变化 | 第21-23页 |
| 2-3-2 钙离子螯合剂或钙通道抑制剂对30C8-HSL 诱导的拟南芥根细胞[Ca~(2+)]_(cyt)瞬时升高的影响 | 第23-29页 |
| 2-4 讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 膜片钳技术检测C4-HSL和30C8-HSL诱导拟南芥根细胞胞内钙离子流动 | 第31-36页 |
| 3-1 材料 | 第31页 |
| 3-1-1 实验植物 | 第31页 |
| 3-1-2 试剂 | 第31页 |
| 3-1-3 仪器设备 | 第31页 |
| 3-2 方法 | 第31-32页 |
| 3-2-1 拟南芥根细胞原生质体制备 | 第31页 |
| 3-2-2 玻璃电极的拉制 | 第31-32页 |
| 3-2-3 膜片钳检测 | 第32页 |
| 3-3 结果 | 第32-35页 |
| 3-3-1 膜片钳技术检测拟南芥根细胞中的离子流动 | 第32-34页 |
| 3-3-2 验证膜片钳所检测拟南芥根细胞中离子流为钙离子流 | 第34-35页 |
| 3-4 讨论 | 第35-36页 |
| 第四章 AHLs 诱导根细胞胞内Ca~(2+)浓度变化和根长生长的关系 | 第36-41页 |
| 4-1 材料 | 第36-37页 |
| 4-1-1 供试植物 | 第36页 |
| 4-1-2 试剂 | 第36页 |
| 4-1-3 1/2 MS 培养基 | 第36-37页 |
| 4-2 方法 | 第37页 |
| 4-3 结果 | 第37-39页 |
| 4-3-1 C4-HSL(10μmol·L~(-1))诱导促进拟南芥幼苗主根生长 | 第37-38页 |
| 4-3-2 30C8-HSL(10μmol·L~(-1)) 诱导促进拟南芥幼苗主根生长 | 第38-39页 |
| 4-4 讨论 | 第39-41页 |
| 第五章 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 攻读学位期间所取得的相关科研成果 | 第47页 |
