| 摘要 | 第1-7页 |
| 1 前言 | 第7-23页 |
| ·仿刺参的研究概况 | 第7-9页 |
| ·仿刺参的分类地位和分布区域 | 第7页 |
| ·仿刺参的外部形态 | 第7-8页 |
| ·海参相关基因的研究 | 第8-9页 |
| ·遗传多样性和常用的研究技术 | 第9-13页 |
| ·遗传多样性的研究技术——遗传标记的发展及其类型 | 第11-13页 |
| ·分子标记的分类 | 第13-16页 |
| ·RAPD | 第14-15页 |
| ·RFLP | 第15页 |
| ·AFLP | 第15-16页 |
| ·DNA指纹图谱 | 第16页 |
| ·ISSR分子标记技术 | 第16-18页 |
| ·ISSR分子标记技术的原理 | 第16页 |
| ·ISSR分子标记技术的优点 | 第16-17页 |
| ·ISSR分子标记技术的应用 | 第17-18页 |
| ·用于分子系统学研究的主要基因 | 第18-21页 |
| ·核基因 | 第18-19页 |
| ·线粒体基因组 | 第19-20页 |
| ·线粒体基因组的遗传与进化 | 第20页 |
| ·mtDNA各部分适用的分类阶元及其研究进展 | 第20-21页 |
| ·CO I基因的应用 | 第21页 |
| ·本文的研究目的和意义 | 第21-23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-38页 |
| ·实验材料及仪器、试剂 | 第23-27页 |
| ·实验材料 | 第23页 |
| ·主要仪器与试剂 | 第23-27页 |
| ·实验方案 | 第27-28页 |
| ·ISSR的研究方法 | 第28-32页 |
| ·基因组DNA的提取 | 第28页 |
| ·DNA模板的检测 | 第28页 |
| ·ISSR-PCR反应体系和反应条件的建立 | 第28-30页 |
| ·ISSR-PCR产物的检测 | 第30-31页 |
| ·ISSR谱带的记录 | 第31页 |
| ·ISSR数据的统计分析 | 第31-32页 |
| ·CO I序列的研究方法 | 第32-38页 |
| ·基因组DNA的提取方法 | 第32-33页 |
| ·DNA模板的检测 | 第33页 |
| ·引物的来源 | 第33页 |
| ·CO I-PCR反应体系的建立 | 第33-34页 |
| ·CO I-PCR产物的检测 | 第34-35页 |
| ·目的片段的回收 | 第35页 |
| ·再次PCR | 第35页 |
| ·琼脂糖切胶回收 | 第35-36页 |
| ·乙醇精制 | 第36页 |
| ·DNA测序 | 第36页 |
| ·CO I序列的分析 | 第36-37页 |
| ·仿刺参CO I区段基因的系统发育学分析 | 第37-38页 |
| 3 结果与分析 | 第38-57页 |
| ·DNA提取结果 | 第38-39页 |
| ·ISSR-PCR反应 | 第39-47页 |
| ·ISSR-PCR反应参数的调整 | 第39-40页 |
| ·ISSR扩增结果 | 第40-42页 |
| ·多态位点比率(P) | 第42-43页 |
| ·有效等位基因数(ne~*) | 第43-44页 |
| ·利用Shannon指数(I~*)估测仿刺参各地理亚群的遗传多样性 | 第44页 |
| ·利用Nei指数(H~*)估测仿刺参各亚群间及各亚群内的遗传分化 | 第44-46页 |
| ·仿刺参各亚群间遗传一致度与遗传聚类分析 | 第46-47页 |
| ·仿刺参CO I序列的分析 | 第47-57页 |
| ·CO I-PCR反应参数的调整结果 | 第47-48页 |
| ·CO I-PCR扩增及其回收 | 第48页 |
| ·PCR产物测序分析 | 第48-53页 |
| ·CO I序列的突变位点和信息位点的分析 | 第53-54页 |
| ·利用CO I序列构建仿刺参的分子系统树 | 第54-57页 |
| 4 讨论 | 第57-65页 |
| ·种群的遗传多样性及多态现象 | 第57-59页 |
| ·种质资源分析 | 第59-60页 |
| ·基因流 | 第60-61页 |
| ·实验方法的优化 | 第61-64页 |
| ·DNA的提取 | 第61页 |
| ·引物的设计原则 | 第61-62页 |
| ·关于PCR体系优化 | 第62-63页 |
| ·ISSR反应的可重复性和可信性 | 第63-64页 |
| ·ISSR分子标记的特点及可应用性 | 第64-65页 |
| 5 结论 | 第65-66页 |
| Abstract | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 学位论文独创性声明 | 第78页 |
| 学位论文版权的使用授权书 | 第78页 |