扶素康的固相合成及纯化
| 中文摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-8页 |
| 前言 | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-25页 |
| ·抗艾滋病新药-扶素康的功能、性质及其制备 | 第9-10页 |
| ·扶素康的理化性质 | 第9-10页 |
| ·扶素康的制备现状 | 第10页 |
| ·多肽固相逐步合成法 | 第10-16页 |
| ·多肽固相合成的过程及原理 | 第10页 |
| ·多肽固相合成中的氨基酸保护策略 | 第10-13页 |
| ·多肽化学合成反应机制 | 第13-15页 |
| ·多肽固相合成的监测 | 第15-16页 |
| ·多肽固相片段缩合法 | 第16-21页 |
| ·多肽片段的选择 | 第17-18页 |
| ·全保护肽段的固相合成 | 第18页 |
| ·全保护肽段的纯化 | 第18-19页 |
| ·连接于树脂上多肽羧基末端全保护肽段的制备 | 第19页 |
| ·固相片段缩合 | 第19-21页 |
| ·多肽的分析方法 | 第21-22页 |
| ·质谱分析 | 第21页 |
| ·HPLC纯度分析 | 第21页 |
| ·其他分析方法 | 第21-22页 |
| ·多肽的分离纯化 | 第22-24页 |
| ·离子交换层析 | 第22-23页 |
| ·反相层析 | 第23页 |
| ·凝胶过滤层析 | 第23页 |
| ·亲和层析 | 第23-24页 |
| ·本文研究的主要内容 | 第24-25页 |
| 第二章 扶素康合成及纯化实验方法 | 第25-42页 |
| ·实验材料与仪器 | 第25-28页 |
| ·实验材料 | 第25-27页 |
| ·实验仪器 | 第27-28页 |
| ·固相化学合成扶素康的实验方法 | 第28-34页 |
| ·固相逐步化学合成扶素康步骤 | 第28-30页 |
| ·固相分段合成扶素康的方法 | 第30-34页 |
| ·固相合成过程中自由氨基监测系统实验方法 | 第34页 |
| ·扶素康多肽片段及扶素康粗品的分析鉴定 | 第34-37页 |
| ·多肽片段的分析鉴定 | 第34-36页 |
| ·合成粗品扶素康的分析鉴定 | 第36-37页 |
| ·固相片段合成扶素康工艺条件优化的研究 | 第37-39页 |
| ·全保护多肽片段切割条件的优化 | 第37-38页 |
| ·多肽片段间缩合工艺的优化 | 第38-39页 |
| ·化学合成扶素康粗品的分离纯化实验方法 | 第39-42页 |
| ·离子交换层析分离纯化扶素康粗品 | 第39-40页 |
| ·用反相高效液相制备层析进一步纯化 | 第40-42页 |
| 第三章 实验结果与讨论 | 第42-66页 |
| ·扶素康多肽片段的色谱分析条件的确定 | 第42-44页 |
| ·流动相的选择 | 第42-43页 |
| ·全保护多肽片段色谱析条件的确定 | 第43-44页 |
| ·扶素康多肽片段的合成工艺优化及合成结果 | 第44-50页 |
| ·全保护多肽片段最佳切割条件的确定 | 第44-46页 |
| ·多肽片段的合成结果 | 第46-50页 |
| ·扶素康粗品的化学合成结果 | 第50-56页 |
| ·扶素康标准品的色谱分析 | 第50-51页 |
| ·扶素康标准曲线的建立 | 第51-52页 |
| ·扶素康粗品的色谱分析 | 第52-56页 |
| ·粗品扶素康的合成结果 | 第56页 |
| ·固相合成产物中扶素康的鉴定 | 第56-58页 |
| ·RP-HPLC 分析确定扶素康 | 第56-57页 |
| ·质谱分析确定扶素康 | 第57-58页 |
| ·扶素康化学合成工艺条件的优化 | 第58-63页 |
| ·扶素康Fmoc固相逐步合成结果及讨论 | 第58-59页 |
| ·最佳分段策略的选择 | 第59-60页 |
| ·反应溶剂优化的结果比较 | 第60-61页 |
| ·缩合反应缩合剂优化的结果比较 | 第61页 |
| ·扶素康固相逐步合成与片段缩合合成的比较 | 第61-63页 |
| ·化学合成扶素康粗品的分离纯化结果 | 第63-65页 |
| ·离子交换层析纯化工艺的确定 | 第63-64页 |
| ·反相高效液相层析 | 第64-65页 |
| ·小结 | 第65-66页 |
| 第四章 结论与展望 | 第66-68页 |
| ·结论 | 第66页 |
| ·展望 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-72页 |
| 发表论文情况 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
