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栉孔扇贝(Chlamys farreri)大规模死亡病原—AVND病毒单克隆抗体的制备及检测技术研究

摘要第1-9页
ABSTRACT第9-11页
前言第11-22页
第一章 AVND病毒单克隆抗体的制备及鉴定第22-41页
 第一节 病毒的分离与纯化--抗原制备第22-23页
  1 病料来源第22页
  2 病毒的分离与纯化第22页
  3 病毒提纯液的负染观察第22-23页
  4 病毒提纯液蛋白质浓度的测定第23页
 第二节 B_(ALB/C)小鼠的免疫第23页
  1 免疫方案及操作第23页
  2 脾内免疫第23页
 第三节 细胞融合及杂交瘤细胞的培养第23-26页
  1 主要试剂的配制第23-24页
  2 小鼠骨髓瘤细胞的准备第24页
  3 饲养细胞的制备第24-25页
  4 免疫脾细胞悬液的制备第25页
  5 细胞融合第25-26页
 第四节 杂交瘤细胞的筛选第26-27页
  1 病贝和健康贝的采集第26页
  2 健康贝组织样品的处理第26页
  3 间接酶联免疫吸附(ELISA)第26-27页
  4 间接免疫荧光检测(IFA)第27页
 第五节 杂交瘤细胞的单克隆化(有限稀释法)第27页
 第六节 单克隆抗体的鉴定第27-29页
  1 胶体金标记免疫电镜技术对MA_(BS)特异性结合位点的检测第27-28页
  2 单克隆抗体亚型的测定第28页
  3 小鼠腹水单克隆抗体的制备及纯化第28-29页
  4 杂交瘤细胞培养上清液及腹水单克隆抗体的滴度测定第29页
 第七节 结果第29-39页
  1 病毒粒子的电镜负染观察第29-31页
  2 骨髓瘤细胞的培养第31页
  3 融合后的细胞在HAT筛选培养液中的培养第31-33页
  4 杂交瘤细胞的筛选及单克隆化第33-36页
  5 胶体金标记免疫电镜技术对MA_(BS)特异性结合位点的观察第36-38页
  6 单抗的亚型、杂交瘤细胞培养上清液及腹水的滴度第38-39页
  7 纯化腹水抗体的蛋白质浓度第39页
 第八节 讨论第39-41页
第二章 AVND病毒免疫学检测技术的建立第41-48页
 第一节 间接ELISA检测技术的建立及其检测的灵敏度第41-43页
  1 腹水单抗稀释比例的确定第41页
  2 间接ELISA检测的步骤第41-42页
  3 ELISA对AVND病毒检测的灵敏度第42-43页
 第二节 IFA检测技术的建立第43-44页
  1 样品采集第43页
  2 IFA检测参数的确定第43页
  3 IFA检测的具体步骤第43-44页
 第三节 DOT-IMMUNOBLOT检测技术的建立第44-46页
  1 操作步骤第44页
  2 对病贝组织检测的灵敏度第44-46页
 第四节 讨论第46-48页
  1 间接ELISA检测第46页
  2 IFA检测第46-48页
第三章 AVND病毒感染栉孔扇贝的免疫学检测第48-66页
 第一节 栉孔扇贝不同生长时期的ELISA检测第48-50页
  1 材料与方法第48页
  2 结果第48-50页
 第二节 患病栉孔扇贝的组织病理学观察第50-53页
  1 组织学切片制备及观察第50页
  2 患病栉孔扇贝的组织病理学观察第50-53页
 第三节 患病栉孔扇贝的IFA检测第53-60页
  1 病毒感染的靶组织第53-55页
  2 细胞病理学变化及组织结构的严重损害第55-57页
  3 AVND病毒在栉孔扇贝体内不同器官和组织的分布及特点第57-60页
 第四节 电镜超薄切片技术对IFA检测组织的回顾性研究第60-63页
  1 实验方法第60页
  2 实验结果第60-63页
 第五节 讨论第63-66页
  1 不同生长季节栉孔扇贝AVND病毒感染率的ELISA检测第63页
  2 患扇病贝的组织学和IFA检测第63-64页
  3 AVND的传播和致病机理第64-66页
小结第66-67页
参考文献第67-73页
已完成的文章第73-74页
致谢第74页

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